معلومة

15.1.3.5: ريكتسيا ريكتسي - علم الأحياء

15.1.3.5: ريكتسيا ريكتسي - علم الأحياء



We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

بقعة جيمينيز لخلايا الدملمف القراد المصابة بالريكتسيا ريكتسي ، العامل المسبب لحمى روكي ماونتين المبقعة. تم العثور على R. ريكتسيأنا عبارة عن بكتيريا صغيرة تنمو داخل خلايا مضيفيها. الجنس ريكتسيا تم تضمينه في قبيلة البكتيرية Rickettsieae وعائلة Rickettsiaceae و Rickettsiales. يشمل هذا الجنس العديد من الأنواع الأخرى من البكتيريا المرتبطة بالأمراض البشرية ، بما في ذلك تلك الموجودة في مجموعة الحمى المبقعة ومجموعة التيفوس. (1979 ؛ CDC ؛ المجال العام)

الكائن الحي

  • أعضاء الجنس ريكتسيا هي عصيات صغيرة جدًا
  • استخدم التنفس الهوائي
  • جميعها طفيليات أو متعايشات داخل الخلايا (يجب أن تعيش داخل خلية أخرى)
  • نقص تحلل السكر والقدرة على تصنيع العديد من الجزيئات الحيوية المطلوبة بما في ذلك ADP و NAD +
    • استخدم منتجات تحلل السكر المأخوذة من الخلية المضيفة كمصدر للكربون والطاقة
    • احصل على ADP و NAD + من الخلية المضيفة
  • كان سلف الميتوكوندريا حقيقية النواة مرتبطًا ارتباطًا وثيقًا بالجنس ريكتسيا

الموطن

  • في سيتوبلازم الخلايا الحيوانية

مصدر

  • مرض من أصل حيواني
  • تنتقل عن طريق النواقل البيولوجية للمفصليات (الحشرات والعناكب)
  • في حالة ريكتسيا ريكتسي، يتم نقل البكتيريا إلى مجرى الدم من خلال لدغة القراد ، وخاصة القراد (الصلب)

علم الأوبئة

  • المرض الناجم عن R. ريكتسي يُسمى Rocky Mountain Spotted Fever (RMSF) بناءً على اكتشافه في ولاية أيداهو عام 1896 ، ولكنه موجود في جميع أنحاء أمريكا الشمالية وأجزاء من أمريكا الجنوبية
    • في الواقع أكثر انتشارًا في الجنوب الشرقي والغرب الأوسط (الشكل ( PageIndex {1} ) أ)
  • زاد معدل الإصابة على مدار العشرين عامًا الماضية أو نحو ذلك ، ويرجع ذلك على الأرجح إلى زيادة الاتصال بين الأشخاص والقراد مع انتشار الضواحي إلى مناطق غير مطورة سابقًا (على غرار الزيادة في مرض لايم الذي هو أيضًا عدوى تنتقل بالقراد) ( الشكل ( PageIndex {1} ) ب)
  • أي شخص قد يتلامس مع القراد (مثل أصحاب الكلاب أو المتنزهين) يكون عرضة للإصابة ، على الرغم من أن هناك البعض الأكثر عرضة للإصابة بمرض شديد:
    • يصاب الرجال بالمرض أكثر من النساء
    • الناس فوق الأربعين
      • الأطفال دون سن العاشرة يمثلون أكبر عدد من الوفيات
    • الأشخاص الذين يعانون من نقص هيدروجيناز الجلوكوز 6 فوسفات (G6PD) ، وهو اضطراب وراثي مرتبط بـ X وبالتالي أكثر انتشارًا عند الرجال
    • الأشخاص الذين يعانون من ضعف في جهاز المناعة
  • 20-25٪ وفيات بدون علاج ؛ 3-5٪ مع العلاج ، ويرجع ذلك أساسًا إلى تأخر التشخيص

مرض سريري

  • تبدأ أعراض حمى جبال روكي المبقعة (RMSF) بعد حوالي أسبوع من لدغة القراد المعدية
  • تؤدي عدوى البطانة والتهاب الأوعية الدموية إلى ظهور معظم الأعراض الملحوظة
  • الأعراض المبكرة:
    • حمى
    • صداع حاد
    • ألم عضلي
    • أعراض الجهاز الهضمي
    • طفح جلدي (2-4 أيام بعد ظهور الحمى): بقع صغيرة ، مسطحة ، وردية ، لطاخات (تغيرات غير بارزة في اللون) على الرسغين ، والساعدين ، والكاحلين وينتشر ليشمل الجذع وأحيانًا راحتي اليدين وباطن القدمين (الشكل ( PageIndex {2} )).
  • الأعراض المتأخرة:
    • يصبح الطفح بقعي حطاطي (مرتفع) بسبب التسرب من الأوعية الدموية ؛ يمكن أن تتطور نمشات (نزيف صغير) في وسط الآفات
    • تغير في الحالة العقلية ، وربما غيبوبة ، بسبب وذمة دماغية
    • وذمة رئوية
    • نخر (موت الأنسجة) في مناطق من الجسم مع انخفاض تدفق الدم
      • غالبا ما يتطلب البتر
    • تلف نظام متعدد الأعضاء
  • مطلوب العلاج الفوري بالدوكسيسيكلين للحصول على أفضل النتائج
    • يوصى بالعلاج بالدوكسيسيكلين حتى إذا كان هناك اشتباه في RMSF
    • العلاج المتأخر أو العلاج بالمضادات الحيوية الأخرى يزيد من فرص النتائج السيئة

عوامل الضراوة الأولية

  • عوامل الفوعة المحددة ليست مفهومة جيدًا
  • تطور العدوى مشابه ل الليستيريا طرق عديدة ، على الرغم من اختلاف الجينات / البروتينات المعنية
    • مرة واحدة R. ريكتسي موجود في مجرى الدم ، يرتبط بالخلايا البطانية ويدخلها من خلال البلعمة المستحثة
    • R. ريكتسي يهرب البلعمي ويتكاثر في السيتوبلازم
    • R. ريكتسي ينتقل بين الخلايا عن طريق بلمرة أكتين الخلية المضيفة لدفعها إلى الخلايا المجاورة
  • ينتج عن إصابة البطانة التهاب الأوعية الدموية والأعراض اللاحقة

معلومة اضافية:

  • http://textbookofbacteriology.net/Rickettsia.html
  • https://www.cdc.gov/rmsf/healthcare-...ers/index.html

مقدمة في الريكتسيوس ، والإيرليخ ، والأنابلازما

علم الجراثيم

استند تعريف عائلة الريكتسيا بشكل أساسي على الصفات المظهرية غير النوعية. في الأصل ، كانت البكتيريا الصغيرة سالبة الجرام ، المرتبطة (أو لا) مرتبطة بالمفصليات وتستلزم (أو لا) الخلايا حقيقية النواة للنمو ، كانت تعتبر ريكتسيا. خلال العشرين عامًا الماضية ، تحدى التسلسل الجيني والتطور الوراثي هذا التصنيف بعمق. تمحور الجدل حول مقدار الاختلاف بين السلالات التي يجب أن تشكل نوعًا فرعيًا. 1-5 من بين التغييرات المتفق عليها ، المشرق تم إنشاؤه من فرع مستقل من شعبه. ال إرليخيا تم إعادة تصنيف المجموعة 6 إلى أربعة أجناس ، مع إرليخيا و أنابلازما كونها مرتبطة بالقراد ، نيوريكتسيا مع الديدان الطفيلية ، و Wolbachia مع كل من المفصليات والديدان الطفيلية. هذا الفصل يقتصر على الريكيتسيال. كلها عبارة عن بكتيريا alphaproteobacteria داخل الخلايا مرتبطة بمضيفات حقيقية النواة (مفصليات الأرجل أو الديدان الطفيلية). بناءً على البيانات الوراثية والمستضدية ، يتم تقسيم الكساح الممرض تقليديًا إلى ثلاث مجموعات - مجموعة الحمى المرقطة ومجموعة التيفوس ومجموعة التيفوس المقشر (الجدول 187-1). تمثل مجموعة الحمى المرقطة معظم أنواع الريكتسيات التي تنقلها القراد. تتكون مجموعة التيفوس من اثنين من مسببات الأمراض البشرية التي تنتقل عن طريق الحشرات. التيفوس الوبائي ناتج عن الريكتسيا prowazekii وينتقل عن طريق قمل الجسم. التيفوس مورين سببه الريكتسيا التيفية وينتقل عن طريق براغيث الجرذان والقطط. تتألف مجموعة التيفوس من الفرك أورينتيا تسوتسوجاموشي فقط وينتقل عن طريق "البق الأحمر".


محتويات

تصنيف ريكتسيا إلى ثلاث مجموعات (الحمى المبقعة ، التيفوس ، التيفوس المقشر) على أساس المصل. تم تأكيد هذا التجمع منذ ذلك الحين من خلال تسلسل الحمض النووي. كل هذه الثلاثة تحتوي على مسببات الأمراض البشرية. تم إعادة تصنيف مجموعة فرك التيفوس كجنس جديد - المشرق - لكن العديد من الكتب المدرسية الطبية لا تزال تُدرج هذه المجموعة ضمن أمراض الريكتسيات.

الريكتسيا أكثر انتشارًا مما كان يعتقد سابقًا ومن المعروف أنها مرتبطة بمفصليات الأرجل والعلقات والطلائعيات. تم تحديد الانقسامات أيضًا في مجموعة الحمى المرقطة ومن المحتمل أن يتم تقسيم هذه المجموعة إلى قسمين. [11] الريكتسي الذي يسكن المفصليات يرتبط عمومًا بالتلاعب التناسلي (مثل التوالد العذري) للاستمرار في سلالة المضيف [12]

في مارس 2010 ، أبلغ باحثون سويديون عن حالة التهاب السحايا الجرثومي لدى امرأة سببها ريكتسيا هيلفيتيكا يعتقد سابقًا أنه غير ضار. [13]

Magnetococcus marinus

المجموعات الفرعية Ib و II و IIIa و IIIb و IV و V

مجموعة الحمى المبقعة

  • ريكتسيا ريكتسي (النصف الغربي للكرة الأرضية)
  • ريكتسيا أكاري (الولايات المتحدة الأمريكية والاتحاد السوفيتي السابق)
  • ريكتسيا كونوري (دول البحر الأبيض المتوسط ​​وأفريقيا وجنوب غرب آسيا والهند)
  • ريكتسيا سيبيريكا (سيبيريا ، منغوليا ، شمال الصين)
  • ريكتسيا أستراليا (استراليا)
  • ريكتسيا فيليس (أمريكا الشمالية والجنوبية وجنوب أوروبا وأستراليا)
  • ريكتسيا جابونيكا (اليابان)
  • ريكتسيا افريقيا (جنوب أفريقيا)
  • ريكتسيا هوجستراالي (كرواتيا وإسبانيا وجورجيا ، الولايات المتحدة الأمريكية) [15]

مجموعة التيفوس

فرك مجموعة التيفوس

  • العامل المسبب لفرك التيفوس المعروف سابقًا باسم R. tsutsugamushi تم إعادة تصنيفها إلى الجنس المشرق.

مقدمة

الجنس ريكتسيا (عائلة Rickettsiaceae رتبة Rickettsiales) تتكون من بكتيريا سالبة الجرام وتلتزم داخل الخلايا ، والتي يتم تصنيفها من الناحية التطورية في مجموعة الحمى المبقعة (SFG) الريكتسية ، ومجموعة التيفوس الريكتسية ، و ريكتسيا بيلي المجموعة الريكتسية و الريكتسيا الكندية مجموعة الريكتسيات [1]. تم وضع الريكتسيات التي تنقلها القراد في مجموعة SFG ، والمعروفة بأنها تسبب العدوى في الحيوانات والبشر [2 ، 3] ، وتشارك في الدورات الوبائية أو الوبائية بين الفقاريات وناقلات المفصليات [4]. تم وصف القراد Ixodid على أنه المستودعات الطبيعية الرئيسية وناقلات الريكتسيا ، مع انتقال عبر الطور وعبر المبيض في القراد [5].

ريكتسيا ريكتسي، العامل المسبب الرئيسي للحمى المبقعة في البرازيل ، انتقل بشكل أساسي إلى البشر عن طريق أمبليوما النحت و Amblyomma aureolatum القراد [6 ، 7 ، 8]. أمبليوما النحت، التي تتميز بالسلوك العدواني والتطفل متعدد الأنواع ، قد تكون أكثر أنواع القراد انتشارًا في سيرادو والمناطق المتدهورة في المناطق الأحيائية للغابات المطيرة في المحيط الأطلسي [9 ، 10]. من ناحية أخرى، أ. aureolatum تم العثور على القراد في الغالب في أجزاء الغابات المطيرة في المحيط الأطلسي ، والتي قد توفر ظروفًا غير حيوية مواتية والحيوانات آكلة اللحوم المحلية كمضيفين أساسيين [8].

الخنازير البرية (سوس سكروفا) تم تصنيفها من قبل القوانين البرازيلية على أنها أنواع دخيلة غازية نشأت عن الخنازير البرية الأوروبية الآسيوية وهجنها ، مع السماح رسميًا بالصيد على مستوى البلاد (التعليمات المعيارية 03/2013) كاستراتيجية للسيطرة على السكان والقضاء عليها [11]. قد تغزو الخنازير البرية المناطق الطبيعية والأنثروبولوجية ، ولا تتنافس فقط على الموارد مع أنواع الحياة البرية المحلية وأنواع الماشية ، ولكن أيضًا تحافظ على دورة حياة القراد والأمراض التي تنقلها القراد [12]. نظرًا لكون الخنازير البرية كبيرة الحجم وغير أصلية وأكثر أنواع الثدييات الغازية ، فقد تم اعتبار الخنازير البرية كمضيف محتمل للثدييات. أ. نحت القراد في المناطق الأحيائية البرازيلية ، ولا سيما سهول بانتانال الفيضية [13 ، 14].

كلاب الصيد (كانيس مألوف) هي الطريقة الأكثر شيوعًا لتتبع الخنازير البرية وصيدها في البرازيل [15]. تم العثور في كثير من الأحيان على الكلاب الريفية البرازيلية التي تصل إلى المناطق الطبيعية لإظهار التطفل أ. aureolatum القراد جنبا إلى جنب مع الأجسام المضادة ل ريكتسيا spp. ، يحتمل أن يزيد من خطر العدوى البشرية عند إحضار القراد المصاب إلى البيئة المنزلية [16 ، 17 ، 18].

كثافة سكان كابيباراس (Hydrochoerus hydrochaeris) في المناطق الموبوءة بالحمى المرقطة في جنوب شرق البرازيل ، والتي تتعلق في الغالب بإنتاج محاصيل قصب السكر [19] ، كانت أعلى 40 مرة من تلك المبلغ عنها في البيئات الطبيعية [20]. وبالمثل ، ارتبطت أعداد الخنازير البرية أيضًا بالعديد من المناطق المزروعة في وسط غرب وجنوب غرب وجنوب البرازيل [21]. ومن ثم ، فمن المنطقي التكهن بأن تداخل بيئات الخنازير البرية وكابيبارا قد يكون له تأثير تآزري على حدوث القراد والأمراض التي تنقلها القراد.

على الرغم من الخنازير البرية ، قد تتعرض كلاب الصيد والصيادون في البرازيل للعديد من الريكتسيات المنقولة بالقراد ، لم تقم أي دراسة حتى الآن بتقييم دورة الحياة المحتملة والبديلة للحمى المرقطة في الخنازير البرية وكلاب الصيد والصيادين. وفقًا لذلك ، كان الهدف من العمل الحالي هو تحديد مناهضة-ريكتسيا الأجسام المضادة ووجود القراد في الخنازير البرية وكلاب الصيد والصيادين في منطقتين مختلفتين من المناطق الأحيائية البرازيلية (أتلانتيك فورست وسيرادو).


أساليب

حدد خطوط الخلايا والكائنات الحية الدقيقة

خطوط الخلايا الجنينية BME26 المشتقة من R. microplus [19] ، و ISE6 ، مشتق من I. كتفي [20] ، تمت تربيتها كما تم وصفها سابقًا [19]. تم تقييم نمو الخلايا وحيويتها عن طريق عد الخلايا في غرفة Neubauer باستخدام الفحص المجهري البصري بعد تلطيخ التريبان الأزرق. كانت الكائنات الحية الدقيقة المستخدمة في التجارب هي البكتيريا موجبة الجرام ميكروكوكس لوتس (ATCC 9341A) ، البكتيريا سالبة الجرام الأمعائية المذرقية K12 (مقدمة من الدكتور هانز ج. بومان ، جامعة ستوكهولم ، السويد) ، الخميرة خميرة الخميرة (ATCC 208353) والريكتسيات Anaplasma marginale (سلالة Jaboticabal) [21] و ريكتسيا ريكتسي (سلالة Taia & # x000e7u) [22].

استخراج الحمض النووي وتوليف (كدنا)

تم استخلاص إجمالي الحمض النووي الريبي والحمض النووي الجيني (gDNA) من خلايا BME26 باستخدام كاشف TRIzol & # x000ae (Thermo Fisher Scientific ، Waltham ، الولايات المتحدة الأمريكية) وتحضير عينات الحمض النووي الأكثر ذكاءً (STRATEC Molecular ، برلين ، ألمانيا) ، على التوالي ، كما هو موضح سابقًا [17] . عولجت عينات الحمض النووي الريبي باستخدام DNase I (Thermo Fisher Scientific) للتخلص من الملوثات gDNA ، وتم تصنيع cDNA باستخدام 250 & # x020131000 & # x000a0ng من إجمالي الحمض النووي الريبي المنقى كقالب في حجم تفاعل 20 & # x000a0 & # x003bcl يحتوي على 2.5 & # x000a0 & # x003bcM oligo (dT) ، 0.5 & # x000a0mM dNTPs ، 5 & # x000a0mM DTT ، 2 & # x000a0 وحدات من مثبط RNaseOUT ريبونوكلياز (Thermo Fisher Scientific) ، و 10 & # x000a0 وحدات من النسخ العكسي SuperScript III (Thermo Fisher Scientific) ، وفقًا لتعليمات الشركة المصنعة & # x02019 . كعنصر تحكم ، تم استخدام قسامة من الحمض النووي الريبي المعالج في تفاعلات PCR لتأكيد التخلص من الحمض النووي الجيني المتبقي (البيانات غير معروضة).

التحديد الكمي لـ أ. الهامش و R. ريكتسي بواسطة PCR الكمي في الوقت الحقيقي

تم تحديد عدد الريكتسيا في خلايا BME26 بواسطة PCR في الوقت الحقيقي الكمي (qPCR) باستخدام بادئات محددة ومسبار تحلل مائي للجينات التي تشفر بروتين السطح الرئيسي 5 (msp5) من أ. الهامش [23] وسيترات سينسيز R. ريكتسي (جلت) [24]. باختصار ، تم إجراء تفاعل التضخيم في ثلاث مكررات تقنية في حجم نهائي 15 & # x000a0 & # x003bcl يحتوي على 2 & # x000a0 & # x003bcl من gDNA (تقريبًا 100 & # x000a0ng) ، 2 & # x000a0 & # x003bcl من خليط من البادئات الأمامية والخلفية ( 0.6 & # x000a0 & # x003bcM لكل منهما) ، 0.02 & # x000a0 & # x003bcl من طقمسبار مان ، 7.5 & # x000a0 & # x003bcl من Maxima Probe / ROX qPCR Master Mix (Thermo Fisher Scientific) ، و 3.5 & # x000a0 & # x003bcl من الماء عالي النقاوة. تم إجراء ردود الفعل على نظام StepOnePlus & # x02122 Real-Time PCR (Thermo Fisher Scientific) باستخدام برامج التدوير الحراري التالية: 10 & # x000a0min عند 95 & # x000a0 & # x000b0C ، تليها 40 & # x000a0 دراجة 15 & # x000a0s عند 95 & # x000a0 & # x000b0C و 30 & # x000a0s عند 60 & # x000a0 & # x000b0C و 45 & # x000a0s عند 72 & # x000a0 & # x000b0C (أ. marginale) و 10 & # x000a0min عند 95 & # x000a0 & # x000b0C ، متبوعًا بـ 40 & # x000a0 دراجات من 15 & # x000a0s عند 95 & # x000a0 & # x000b0C ، 15 & # x000a0s عند 55 & # x000a0 & # x000b0C ، و 30 & # x000a0c0 #R. ريكتسي). في كل تحليل ، كانت دورة القياس الكمي (Cف) قيم التفاعلات باستخدام سلسلة تخفيف من 10 2 إلى 10 7 نسخ من البلازميد (pGEM - & # x000aeT Easy، Promega، Madison، USA) تحتوي على جزء من أي منهما msp5 أو جلت تم استخدامها لإنشاء منحنى قياسي لتحديد العدد المطلق لـ أ. الهامش و R. ريكتسي، على التوالى. تحقيقا لهذه الغاية ، تم تسلسل هذه الأجزاء في السابق لتأكيد هويتها للتسلسل المعني في قواعد البيانات العامة.

الاشعال

تم إجراء التصميم التمهيدي لمقايسة RT-qPCR عالية الإنتاجية الموائع الدقيقة يدويًا ، وتضمنت المعلمات درجة حرارة التلدين التمهيدي من 58 & # x000a0 & # x000b0C إلى 62 & # x000a0 & # x000b0C ، طول التمهيدي من 20 إلى 21 & # x000a0bp ، التمهيدي G / محتوى C بحوالي 50٪ وطول amplicon 100 & # x02013200 & # x000a0bp. تم التحقق من التكامل الذاتي المحتمل وتشكيل التمهيدي باستخدام برنامج FastPCR Professional (http://primerdigital.com/fastpcr.html). تم حساب كفاءة البادئات المستخدمة في RT-qPCR في نظام BioMark Real-Time PCR ، والأشعال فقط مع كفاءة تضخيم أعلى من 90 (C الخطيف القيم). جميع البادئات المستخدمة في هذه الدراسة مفصلة بالكامل في ملف إضافي & # x000a0 & # x000a01.

الموائع الدقيقة RT-qPCR عالية الإنتاجية

تم إجراء المحفزات الميكروبية لخلايا BME26 ، واستخراج الأحماض النووية ، و RT-qPCR عالي الإنتاجية ، وتحليل البيانات في وقت واحد إلى الدراسة السابقة لمجموعة البحث لدينا [17]. كما هو معترف به من قبل الحد الأدنى من المعلومات لنشر تجارب PCR الكمية في الوقت الحقيقي ، وإرشادات MIQE [25] ، تم فحص التعبير عن الجينات المرشحة المختلفة لتطبيع بيانات RT-qPCR. في تحليلنا ، تم النظر في ثمانية جينات مرشحة: عامل الاستطالة -1 ألفا (ef-1 & # x003b1) ، نازعة هيدروجين الغليسيرالديهيد -3 فوسفات (جاب) ، بيتا أكتين (فعل) ، نازعة هيدروجين المالات (مده) ، نازعة هيدروجين الجلوتامات (gdh) ، السيتوكروم ج أوكسيدوروكتاز (سيبور) ، 40S بروتين الريبوسوم S3A (ريبس) وبروتين الريبوسوم L4 (rpl4). تم تحليل مستويات تعبيرهم بشكل فردي (Cف القيم) وفي تركيبة (المتوسط ​​الهندسي لـ Cف القيم) [26]. بالنسبة لظروفنا التجريبية ، كان أفضل مرجع لتطبيع qPCR في خلايا BME26 هو الوسط الهندسي لـ Cف قيم مده, gdh, سيبور و 40 SRPS3A بخصوص كل من C.ف الاختلاف وكفاءة التمهيدي.

مقايسة إسكات الجينات RNAi

للتحقق من أهمية الاستجابة المضادة للأكسدة لخلايا BME26 أ. الهامش العدوى ، جينات ترميز الكاتلاز (GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CV451339"، "term_id": "82846626"، "term_text": "CV451339"> > CV451339) ، gpx (GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CV440147"، "term_id": "82835438"، "term_text": "CV440147" >> CV440147) ، trxr (GenBank: <"type": "entrez-nucleotide" و "attrs": <"text": "CV451339" و "term_id": "82846626" و "term_text": "CV451339" >> CV451339) و oxr1 (GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "MF503617"، "term_id": "1318866916"، "term_text": "MF503617" >> MF503617) تم إسكاتها باستخدام تدخل RNA بوساطة (RNAi). جين ترميز بروتين سطح المرزويت 1 (ملس1) من المتصورة المنجلية تم استخدامه كعنصر تحكم (GenBank: <"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "AF061132" ، "term_id": "3821956" ، "term_text": "AF061132" >> AF061132) . تم تضخيم شظايا الحمض النووي المستهدفة باستخدام (كدنا) من خلايا BME26 أو تحتوي على البلازميد ملس1 والبرايمر المصممة ل Rmcat, Rmgpx, Rmtrxr, Rm oxr1 أو بفمسب1 يحتوي على تسلسل محفز T7 بوليميريز (ملف إضافي 1: الجدول S1). كانت ظروف ركوب الدراجات في PCR هي: 95 & # x000a0 & # x000b0C لـ 30 & # x000a0s متبوعة بـ 30 & # x000a0 درجة 55 & # x000a0 & # x000b0C لـ 1 & # x000a0min و 72 & # x000a0 & # x000b0C لـ 1 & # x000a0min.تم تحليل منتجات PCR بواسطة الرحلان الكهربائي لهلام الاغاروز وتنقيتها باستخدام مجموعة تنقية GeneJet (فيرمنتاس ، فيلنيوس ، ليتوانيا). تم تصنيع dsRNAs باستخدام مجموعة T7 RiboMax & # x02122 Express RNAi System (Promega) و 950 & # x000a0ng من شظايا الحمض النووي المضخمة بواسطة PCR كقالب. بعد توليف الرنا المزدوج الجديلة ، تم فحص النوعية عن طريق الرحلان الكهربائي في هلام أجار. تم استخدام dsRNA فقط مع نطاق فريد بالحجم المتوقع.

تمت زراعة خلايا BME26 (1.5 & # x000a0 & # x000d7 & # x000a010 6) في قوارير لمدة 24 & # x000a0h قبل إضافة 10 13 جزيء dsRNA في وسط عدوى L15B [27]. تم تحضين خلايا BME26 في وقت واحد مع خليط من dsقط، سgpxو دسtrxrأو دسoxr1 وحده دملستم استخدام 1 كعنصر تحكم. بعد 24 & # x000a0h ، تم تحدي خلايا BME26 بـ أ. الهامش. تحقيقا لهذه الغاية ، فإن الثقافات المجمدة من أ. الهامش تم استخدام خلايا ISE6 (3 & # x000a0 & # x000d7 & # x000a010 8 بكتيريا / قارورة) تمامًا عن طريق تعريض العينات لثلاث دورات من التجميد في النيتروجين السائل متبوعًا بالذوبان في حمام مائي عند 37 & # x000a0 & # x000b0C. بعد ذلك ، تم الطرد المركزي للتعليق عند 500 & # x000d7 ز لمدة 5 & # x000a0min عند 4 & # x000a0 & # x000b0C ، وتمت إضافة نفس الحجم من المادة الطافية كلقاح في جميع التجارب. تم تخزين قسامة من اللقاح لتقدير البكتيريا جنبًا إلى جنب مع القسامات التي تم جمعها من كل نقطة زمنية. تم استخدام القياس الكمي للقاح أيضًا لحساب نسبة الإصابة بالريكتسيا في كل تجربة. لذلك ، قد تختلف النسب بين المقايسات من 1: 9 إلى 1:90. بعد الحضانة لـ 72 & # x000a0h إضافي ، تم التخلص من المادة الطافية ، وتم غسل الطبقة الأحادية للخلية باستخدام PBS ثم فصلها باستخدام مكشطة أو محلول Trypsin-EDTA (Vitrocell ، كامبيناس ، البرازيل). تم طرد تعليق الخلية عند 3000 & # x000d7 ز لمدة 10 & # x000a0min عند 4 & # x000a0 & # x000b0C. تم استخراج RNA و gDNA من الحبيبات الناتجة واستخدامها لتقييم إسكات الجينات والتقدير الكمي للبكتيريا ، على التوالي. التعبير عن الجينات المستهدفة (قط, gpx ، trxr ، oxr1) والجين المرجعي الداخلي (40S بروتين الريبوسوم S3a) بواسطة SYBR الأخضر الكمي في الوقت الحقيقي PCR (qPCR). تم إجراء التفاعلات على نظام StepOnePlus & # x02122 Real-Time PCR (Thermo Fisher Scientific). كان شرط PCR 95 & # x000a0 & # x000b0C لـ 10 & # x000a0min متبوعًا بـ 40 & # x000a0ycles من 95 & # x000a0 & # x000b0C لـ 15 & # x000a0s و 60 & # x000a0 & # x000b0C لـ 1 & # x000a0min. تم تحليل التعبير الجيني كما هو موصوف في تجربة RT-qPCR عالية الإنتاجية الموائع الدقيقة [17]. عدد ال أ. الهامش في خلايا BME26 تم تحديدها بواسطة qPCR. تمت معالجة خمسة وثمانية مكررات بيولوجية (قوارير من خلايا BME26) لكل مجموعة (تمت معالجتها إما بالتحكم أو بالجين المستهدف dsRNA) في الثلاثي و oxr1 تجارب إسكات ، على التوالي. كانت نسبة الإصابة 1: 9 (إسكات ثلاثي) و 1:64 (oxr1 إسكات).

الكمي من H.2ا2

ح2ا2 تم قياسه باستخدام Amplex Red (Invitrogen) باتباع توصيات الشركة المصنعة (Amplex & # x000ae Red Hydrogen Peroxide / Peroxidase Assay Kit ، Thermo Fisher Scientific). قبل التحدي البكتيري ، تم زراعة 5 & # x000a0 & # x000d7 & # x000a010 4 خلايا BME26 فرعية في 24 طبقًا جيدًا لمدة 24 & # x000a0h متبوعًا بغسلتين مع محلول فوسفات Krebs-Ringer مع الجلوكوز (KRPG) (145 & # x000a0mM NaCl ، 5.7 & # x000a0mM فوسفات الصوديوم ، 4.86 & # x000a0mM بوكل ، 0.54 & # x000a0mM CaCl2، 1.22 & # x000a0mM MgSO4، 5.5 & # x000a0mM الجلوكوز ، pH & # x000a07.35) والحضانة في KRPG التي تحتوي على 100 & # x000a0 & # x003bcM Amplex Red (10-acetyl-3،7-dihydroxyphenoxazine) و 0.2 & # x000a0U / ml بيروكسيداز الفجل (HRP). تم تحدي خلايا القراد أ. الهامش (نسبة 1:34) تم الحصول عليها كما هو موضح أعلاه (مقايسة إسكات الجينات RNAi). تم تحضير محلول خلية ISE6 غير المصابة كما هو موصوف لـ أ. الهامش تم استخدام اللقاح كعنصر تحكم. بالإضافة إلى ذلك ، كانت خلايا BME26 المحتضنة بـ 125 & # x000a0 & # x003bcM ميناديون بمثابة عنصر تحكم إيجابي [28 ، 29]. في 1 و 6 و 24 و 72 & # x000a0h بعد التحدي في 34 & # x000a0 & # x000b0C في الظلام ، تم طرد وسيط الحضانة لمدة 2 & # x000a0min عند 10000 & # x000d7 ز، وتم نقل المادة الطافية إلى ألواح زراعة الخلايا (Corning Costar& # x000ae CLS3991 ، سيجما الدريتش). تم قياس التألق باستخدام SpectraMax 190 (الأجهزة الجزيئية ، Sunnyvale ، الولايات المتحدة الأمريكية) مع الإثارة عند 560 & # x000a0nm والانبعاثات عند 590 & # x000a0nm وتمت مقارنتها بمنحنى قياسي يحتوي على 0.05 إلى 500 & # x000a0pmol من H2ا2. تم تحليل ثلاث عينات بيولوجية لكل معاملة.

تحليل احصائي

تم تحليل الفروق بين العلاجات إحصائيًا بواسطة اختبار Mann-Whitney باستخدام GraphPad Prism الإصدار 7.0 لنظام التشغيل Windows (برنامج GraphPad ، سان دييغو ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية). أ ص- القيمة الأقل من 0.05 اعتبرت ذات دلالة إحصائية.


جمعيات ريكتسيا القراد مع الحيوانات البرية ودوراتها السيلفية

العزلة الأولى من R. ريكتسي من حيوان مصاب طبيعيًا في أمريكا الشمالية ، لم يتم تصنيعه حتى عام 1954 ، عندما استعاد غولد وميس سلالة خفيفة من أنسجة فأر مرج (Microtus pennsylvanicus) في فرجينيا (26). تم العثور على سلالة أخرى من كبد أرنب قطني مصاب بشكل طبيعي (Sylvilagus floridanus) محاصرين في نفس الولاية عام 1961 (28). بعد ذلك ، عزلة R. ريكتسي مصنوعة من أنسجة الطحال والكبد من الفئران البرية (بيروميسكوس ليوكوبوس, Pitymys Pinetorum) ، فئران قطنية (سيغمودون هيسبيدوس) ، سنجاب أرضي ذهبي (Citellus lateralis tescorum) ومن السنجاب (يوتامياس اموينوس) محاصرون في فرجينيا وغرب مونتانا (27 ، 30). كانت العديد من الحيوانات الصغيرة ، وخاصة القوارض البرية ، من مصادرها R. sibirica تم الحصول عليها عبر منطقة واسعة معروفة بتوطن NATT (41).

على الرغم من هذه الملاحظات الميدانية الحالية ، يظل السؤال بلا إجابة عما إذا كانت كل هذه الحيوانات أو أنواعًا معينة فقط تمثل مصادر فعالة لعدوى القراد ومدة توفير هذه الوظيفة بعد الحصول على العامل. على سبيل المثال ، الأخشاب كثيفة الذيل (نيوتوما ج. سينيريا) كانت سلبية باستمرار لـ R. ريكتسي عن طريق العزلة ، على الرغم من أنها نشأت من وادي Bitterroot في غرب مونتانا حيث يتوطن RMSF بدرجة عالية (22). لمعالجة هذا الاختلاف ، بورجدورفر وآخرون. (22) أجرى تحليلات كمية لقابلية التعرض للضراوة R. ريكتسي سن المنشار لأنواع مختلفة من الحيوانات الصغيرة وتقييم دورها كمصادر محتملة لإصابة اليرقات أندرسوني (22). البيانات التي تم الحصول عليها من خلال هذه الدراسة الشاملة والمهمة هي توضيحية لتجارب نموذجية ولكنها تؤكد على قيود التجارب المعملية. ما إذا كانت جرعة التحدي الريكتسي تتجاوز بكثير تلك الناتجة عن المستويات المنخفضة من الإصابة بالقراد المتكرر وتأثيرها حيث قد يكون الحيوان بالفعل محصنًا ضد الريكتسيا ، أو ما هي الاستجابات التي تحدث للإصابة بقراد مصاب واحد ، هي مسائل كمية مهمة. وبالمثل ، فإن دور المؤثرات القراد في تسهيل أو تخفيف العدوى المتعلقة بالتلقيح داخل الأدمة ، وتحت الجلد ، والعضل ، وداخل الصفاق للعامل المستنبت هو أيضًا مصدر قلق (48). يجب أن نتذكر أن القراد يقوم بتصفية كميات كبيرة من الدم أثناء إطعامهم بحيث لا تعكس فحوصات محتوى الريكتسي في عينات الدم المضيف من نقطة زمنية واحدة بدقة الكمية التي قد تحصل عليها القراد. تعرضت الحيوانات البرية التي تم اصطيادها إلى nymphal أندرسوني الإصابة ب R. ريكتسي سن المنشار ، سلالة قرادة خبيثة لخنزير غينيا تنشأ من الجانب الغربي من وادي Bitterroot (22). طورت السناجب الأرضية والسنجاب الكولومبية الريكتسية التي ظهرت في اليوم الثالث أو الرابع واستمرت لمدة 6 & # x020137 يومًا بحد أقصى 9 أيام في سنجاب واحد. تم العثور على أكبر تركيزات من الريكتسيا في كلا النوعين من القوارض في اليوم 6 أو 7 ، عندما لا تزال مخففات الدم 10 & # x022123 تنتج العدوى في خنازير غينيا. للمقارنة ، لوحظ داء الريكتسيما في خنازير غينيا التي تم تغذيتها بنفس عدد القراد المصاب الذي تم استخدامه مع السناجب الأرضية والسنجاب الكولومبي. كان تركيز الريكتسيا في دم الخنازير الغينية أعلى من ذلك بكثير ، مع فترة طويلة لا تقل عن 6 أيام حيث يوجد 100 أو أكثر من الجرعات المعدية لكل 0.5 مل من الدم. عانت السناجب المطحونة بالذهب من ريكتسيا الدم بحد أقصى 10 3 لتر لفترة قصيرة نسبيًا. في الأرانب ذات الأحذية الثلجية ، استمر ريكتسيا الدم لمدة 5 أيام ، لكن تركيزات الريكتسيا كانت أقل بكثير ونادراً ما تجاوزت 10 جرعات معدية من خنازير غينيا. كانت الأخشاب ذات الذيل الكثيف أقل عرضة للإصابة ، حيث يمكن إظهار الريكتسيا فقط بعد التعلق بمئات من القراد المصابة. في فئران المروج ، انتشر الريكتسيا لمدة 6 & # × 020138 يومًا بتركيزات وصلت ، في بعض العينات ، إلى 1000 جرعة معدية على الأقل لكل 0.5 مل من الدم. أجريت تجارب لاحقة مع السناجب الأرضية ذات اللون الذهبي الكولومبي ، وفئران المروج ، والأرانب البرية ذات الأحذية الثلجية. أشارت النتائج إلى أن ذلك ساذج أندرسوني أظهرت اليرقات التي تتغذى على هذه العوائل خلال ذروة ريكتسيا الدم معدلات إصابة عالية دائمًا بينما تلك التي تتغذى خلال المراحل الأولية أو النهائية التي تناولت الكساح غير كافية في الأعداد لإثبات إصابة أنسجة القراد بشكل دائم. وفقًا لذلك ، يجب اعتبار فئران المروج ، والسناجب الأرضية الكولومبية ، والسنجاب ، والسناجب الأرضية ذات الغطاء الذهبي مصادر عالية الكفاءة للعدوى ، على الأقل بالنسبة لتلك القراد التي تتغذى خلال الفترات التي توجد فيها كميات كبيرة من الريكتسيا في الدم. في فئران المروج ، التي بدت أنها الأكثر حساسية ، انتشر الريكتسي بتركيزات 10 2 & # x0201310 3 جرعات معدية لخنازير غينيا لمدة تصل إلى 4 أيام. تم اكتشاف عيار مماثل ، على الرغم من أنه لمدة يوم أو يومين فقط ، في السنجاب والسناجب الأرضية ذات الغطاء الذهبي. أظهرت هذه الدراسات أن الأرانب البرية تستجيب لدغات القراد المعدية مع الريكتسييميا التي تكون بشكل عام أكثر اعتدالًا من تلك التي لوحظت في السناجب الأرضية أو السناجب أو فئران المروج. ومع ذلك ، لمدة يوم أو يومين على الأقل ، قد تصل العيارات المعدية إلى المستوى اللازم لإصابة 50٪ أو أكثر من اليرقات أندرسوني. على الرغم من هذه القيود ، فإن عزلات R. ريكتسي تم انتشالها من دم أرنب الحذاء الثلجي (ليبوس أمريكانوس) (30). أخيرًا ، الحوت ذو الذيل الكثيف ، مجموعة مشتركة من الأخشاب غير الناضجة أندرسوني، هو النوع الوحيد من الحيوانات التي لم تنتشر الكساح في الدم بعد التعلق بالقراد المصاب ، مما يشير إلى أن هذا القوارض ليس عرضة للإصابة بحمى الريكتسيا المبقعة وليس له أهمية لإصابة القراد في الطبيعة.

على الرغم من أن الخزان الطبيعي لـ ر.كونوري لم يتم إثباته بالكامل بعد ، Rovery et al. اقترح أن الأرانب يمكن أن تكون دموية دون أن تتطور إلى مرض شديد ، لذا فإن الأرانب البرية (Oryctolagus cuniculus) قد يكون خزانًا لـ R. conorii conorii ويمكن أن تلعب دورًا في نقل R. conorii conorii في البحر المتوسط ​​الفرنسي (40). تشير هذه الملاحظات والمنشورات السابقة الأخرى إلى أن الأرانب والأرانب البرية قد تلعب دورًا مهمًا في تداول مسببات أمراض الريكتسي في الطبيعة. إلى حد ما ، تزامن توزيع الحالات البشرية لـ RMSF في غرب الولايات المتحدة مع توزيع Nuttall & # x02019s cottontail (Sylvilagus nuttallii). هذا الحيوان هو مضيف مهم لمراحل اليرقات والحورية أندرسوني و H. leporispalustris. علاوة على ذلك ، هناك تداخلات كبيرة في النطاقات الجغرافية لـ المتغيرات D. والأرانب القطنية الشرقية (S. floridans), اوكسيدنتاليس وأرنب فرشاة ساحل المحيط الهادئ (S. bachmani) و د. بارومابيرتوس والأرنب جاك أسود الذيل (Lepus californicus). سيلفيلاجوس هي واحدة من الأجناس الحيوانية القليلة الموجودة في كل من أمريكا الشمالية والجنوبية ، وربما كان لها دور في إدخال R. ريكتسي وغيرها من الريكتسيا في أمريكا الجنوبية أو العكس (5 ، 41). وبالمثل ، وفقًا لـ Lyskovtsev ، فإن الأرنب الأوروبي (Lepus europeus Pallas) من بين الحيوانات المعروفة بتطورها لريكتسييميا كافية لاستعادة عزلة من R. sibirica (41). هناك أيضًا أدلة تجريبية تشير إلى دور الأرانب في تداولها R. slovaca (49).

تم تورط العديد من الأنواع الأخرى من الحيوانات البرية في الحفاظ على الريكتسي ولكن فقط في سياق أدوارهم كمضيفين لوجبات الدم لأنواع مختلفة من القراد. يمكن أن تختلف هذه الحيوانات بالتأكيد في قابليتها للإصابة بالريكتسي ، سواء كانت تتطور إلى مرض سريري أو مجرد عدوى تحت إكلينيكية ، وسواء كانت العدوى مستمرة أو تحدث مناعة معقمة ، ومدى مناعتها ضد العدوى اللاحقة. قد يكون حجم الجسم مهمًا أيضًا حيث يمكن أن يزداد عدد القراد التي قد تلتصق بشكل كبير مع تقدم الشخص من صغير إلى متوسط ​​الحجم إلى مضيف كبير (50). وقد تورط الأبوسوم في صيانة R. ريكتسي في كل من أمريكا الشمالية والجنوبية (27 ، 33). تتطور أنواع مختلفة من الأبوسوم فقط إلى عدوى غير ظاهرة ، سواء في الطبيعة أو بعد التلقيح التجريبي ، ولكنها يمكن أن تحتمل على الأقل 3 & # x020134 أسابيع من ريكتسيا الدم التي يمكن إثباتها عن طريق تغذية اكتساب القراد والعزل المباشر للريكتسيا التي تستمر في أنسجتها (27 ، 33). تم إجراء ملاحظات مماثلة للكابيبارا (Hydrochoerus hydrochaeris) ، وهو قارض كبير ، وهو مضيف حيواني أساسي لـ Amblyomma cajennense في البرازيل (31 ، 32).


نتائج

تفشي الطيور والقراد

دراسة 2009

نتج عن موسم الربيع الأول & # x02019s في أنتيكيثيرا 2522 طائرًا مهاجرًا ، يمثلون 55 نوعًا مختلفًا تم فحصها لإصابة القراد. وبالمثل ، تم فحص 4913 من الطيور المهاجرة في كابري ، تمثل 49 نوعًا من الطيور. بشكل عام ، تم جمع 376 قرادًا من إجمالي 195 طائرًا ، منها 137 قرادًا تم جمعها من 65 طائرًا في أنتيكيثيرا و 239 قرادًا من 130 طائرًا في كابري.

دراسة 2010

خلال فصل الربيع في أنتيكيثيرا ، تم القبض على 3332 طائرًا ، يمثلون 54 نوعًا مختلفًا ، وفحصهم بحثًا عن إصابة بالقراد ، مما أدى إلى إجمالي 200 قراد من 103 طائر. في المقابل ، تم فحص 4022 طائرًا في كابري ، تمثل 49 نوعًا ، مما أدى إلى إجمالي 158 قرادًا من 100 طائر.

طيور

عند دمج البيانات من مرصد الطيور في كلا العامين ، تم اصطياد 79 نوعًا من الطيور وفحصها بحثًا عن القراد ، 27 نوعًا وجدت أنها مصابة بالقراد. وبلغ عدد الطيور التي تنتمي إلى أي من الأنواع الـ 27 13322 فردًا من إجمالي 14789 طائرًا تم اصطيادها. كانت الأنواع الأكثر إصابة بالقراد لكل طائر على حدة هي Woodchat Shrike (لانيوس سيناتور) والتي حملت 53 قرادًا على 122 طائرًا. ذا وينشات (ساكسي كولا روبيترا) كان من أكثر الطيور شيوعًا حيث تم اصطياد ما مجموعه 1،472 قرادًا فرديًا. ومع ذلك ، كان هذا النوع أقل عبئًا من القراد لكل طائر على حدة ، ولكنه كان أيضًا النوع الذي ساهم في أكبر عدد من القراد (135). تم إحضار العديد من القراد تقريبًا ، 123 ، من قبل 1،244 Common Whitethroats (Sylvia communis) (جدول & # x000a0 2).

الجدول 2

الطيور الموبوءة بالقراد المصاب بالريكتسيا

أنواع الطيور& # x000a0 لا. ريكتسياالنيابة. القراد المصاب (العدد الكلي للقراد) / لا. الطيور الحاملة للقراد المصابة ريكتسياالنيابة. (عدد الطيور التي تحمل القراد)& # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 20092010العدد الإجمالي المتضمن في الدراسة
الاسم اللاتينياسم شائعأنتيكيثيراكابريأنتيكيثيراكابري
& # x000a0 & # x000a0 القرادطيورالقرادطيورالقرادطيورالقرادطيورالقرادطيور
Acrocephalus arundinaceusهازجة ريد العظيم & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 8 1 (11) 2 (3) & # x000a0 & # x000a0 11 197
Acrocephalus schoenobaenusسيدج الدخلة 10 2 (16) 5 (6) & # x000a0 & # x000a0 15 (23) 4 (7) & # x000a0 & # x000a0 39 459
Acrocephalus scirpaceusريد الدخلة 3 (4) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 0 (2) 0 (1) & # x000a0 & # x000a0 6 24
Anthus trivialisشجرة حفرة 1 (4) 1 (4) 3 (7) 2 3 (3) 2 (5) 2 (5) & # x000a0 & # x000a0 16 406
Caprimulgus europaeusالنيجار الأوراسي & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 2 (2) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 2 25
كاردوليس كلوريسالحسون الأوروبي & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 1 4 (4) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 4 21
كاردوليس سبينوسسيسكين & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 1 5 (1) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 1 3
إرتاكوس روبيكولاروبن الأوروبي 2 (4) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 0 (12) 0 (6) & # x000a0 & # x000a0 16 127
Fidecula albicollisكولارد صائد الذباب 3 (3) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 0 (3) 0 (2) & # x000a0 & # x000a0 6 174
فيديكولا هيوليوكا *الأوروبي Pied Flycatcher 2 (7) 2 (7) 20 (44) 15 (31) 0 (8) 0 (4) 5 6 (31) 4 (22) 59 2008
Hippolais icterina *إكترين الدخلة 2 (3) 1 (2*) 1 (1*) 1 (1*) 1 (1) 1 (1) 0 (2) 0 (1) 7 475
Hippolais pallidaالدخلة الزيتية 1 (1) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 1 (1) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 2 46
لانيوس سيناتوروودتشات صرد 20 (25) 4 (5) 3 (3) 2 (2) 12 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 (25) 8 (11) & # x000a0 & # x000a0 53 122
Luscinia megarhynchosالعندليب المشترك 12 (15) 3 (6*) 0 (1) 0 (1) 11 (20) 4 (7) & # x000a0 & # x000a0 36 319
موتاسيلا فلافاالذعرة الصفراء 9 (9) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 1 (2) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 11 9
Muscicapa striataمرقط صائد الذباب & # x000a0 & # x000a0 2 (2) 2 (2) 1 (1) 1 (1) 3 (4) 3 (4) 7 1187
Oenanthe oenantheأبلق & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 2 (2) 2 (2) 13 (17) 4 (4) 19 82
أوريولوس أوريولوس *الأوريول الذهبي 0 (2) 0 (2) 4 (9) 3 (4) 3 7 (6) 3 (5) 0 (1) 0 (1) 18 293
Phoenicurus phoenicurus *بداية حمراء مشتركة 5 (10) 3 (6) 3 (10) 3 (6) 10 8 (24) 10 (15) 1 (7) 1 (4) 51 386
فيلوسكوبوس أورينتاليسالدخلة الشرقية بونيلي & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 3 (7) 3 (4) & # x000a0 & # x000a0 7 33
فيلوسكوبوس سيبيلاتريكسوود الدخلة 1 (5) 1 (4) 6 (13) 5 (12) 2 (5) 2 (5) 3 (10) 3 (9) 33 1238
Phylloscopus trochilusالصفصاف الدخلة 1 (2) 1 (2) 1 (1) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 0 (1) 0 (1) 4 738
ساكسي كولا روبترا *وينشات 0 (2) 0 (2) 16 (73) 13 (33) 1 (3) 1 (2) 23 (58) 14 (34) 135 1472
سيلفيا بورين *حديقة الدخلة 2 9 (3) 2 (3) 0 (3) 0 (1) 3 (4) 3 (4) 1 (3) 1 (3) 13 2190
سيلفيا كومونيس *Whitethroat المشتركة 10 (16) 6 (8) 43 (70) 24 (33) 8 (13) 6 (9) 16 (24) 10 (17) 123 1244
توردوس فيلوميلوسأغنية القلاع 4 (5) 1 (1) & # x000a0 & # x000a0 7 10 (13) 2 (2) & # x000a0 & # x000a0 18 23
Upupa epopsالهدهد الأوراسي & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 2 (2) 2 (2) & # x000a0 & # x000a0 2 18
أنواع غير معروفة & # x000a0 0 (1) 0 (1) 1 (2) 1 (2) & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 3 3
& # x000a027 نوعا88 (137)36 (65)103 (239)72 (130)97 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 (200)61 (103)65 (158)40 (100)353 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 (734)13 322**

حمل 96٪ من القراد المصاب ريكتسيا إيشليماني، تم وضع علامة على تلك القراد التي تحمل أنواعًا أخرى من الريكتسيا ، انظر Tablee & # x000a0 5 لمزيد من التفاصيل. واحد 1 ريكتسيا ص. (84748).

2. اثنان ريكتسيا س. (84607 و 84609) 3. واحد ريكتسيا ص. (84154) من Ixodes frontalis أنثى بالغة 4. واحد محتمل R. افريقيا 5. واحد جمهورية افريقيا 6. واحد ممكن R. monacensis (113618) من Ixodes frontalis 7. واحد ريكتسيا ص. (84751) 8. واحد جمهورية افريقيا 9. واحد ريكتسيا ص. (84594) من أ Haemaphysalis ص. حورية 10. أربعة R. افريقيا وواحد محتمل R. افريقيا * طائر واحد مع تحديد نوع غير مؤكد. ** لا يتم تضمين أنواع الطيور التي لا تحتوي على القراد.

القراد

تضمنت عينات عامي 2009 و 2010 ما مجموعه 751 علامة منها 734 متوفرة للتحليل. كانت المرحلة الأكثر شيوعًا هي الحوريات ، حيث تم جمع 488 حشرة فردية.أما باقي القراد فكان 198 يرقة و 4 بالغين و 44 قرادًا لمرحلة غير محددة ، وهذا الأخير بسبب فقدان الصور أو الصور الفوتوغرافية ذات الجودة التقنية الرديئة. تم تجميع عينتين من القراد لأسباب عملية ، واحدة مع حورية واحدة واثنين من حورية مع يرقة واحدة. يتم عرض عدد القراد وأنواعها ومراحل نموها في الجدول & # x000a0 3. في المجموع 398 طائرا أصيبت بالعدوى وتم التخلص منها من القراد (الجدول & # x000a0 2). تراوح عدد القراد لكل طائر مصاب من 1 إلى 20 37٪ (ن & # x02009 =& # x02009148) من الطيور التي حملت أكثر من علامة واحدة. من بين جميع القراد التي يمكن تقييمها (567/683) ، تم تغذية 83 ٪ من القراد بشكل كامل أو جزئي. ينتمي معظم القراد إلى H. marginatum Sensu lato (s.l) ، والتي شكلت 90٪ (ن& # x02009 = & # x02009658 عينات) من مجموعة القراد. من أصل عشرة حشرات متسلسلة جينيًا ، تم تحديد تسعة على أنها روفيبس H. وواحد مثل H. marginatum الحسية الصارمة ، والتي دعمت تشخيص الأنواع على أساس التشكل [20]. سبعة وعشرون القراد من الجنس Ixodes تم جمعها في مراصد الطيور. تم التعرف على ثلاثة وعشرين شخصًا على أنهم أنا أمامي. ثمانية من هؤلاء Ixodes النيابة. كان القراد يتطفل على روبينز الأوروبي (إرتاكوس روبيكولا). اثنان غير مصابين ريسيفالوس ص. الحوريات واثنان Haemaphysalis ص. كما تم جمع الحوريات. واحدة من Haemaphysalis ص. تم القبض على الحوريات (ضع علامة 84594 ، الجداول & # x000a0 4 و & # x200B and5) 5) على لعبة Garden Warbler (سيلفيا بورين) في أنتيكيثيرا 2009 المصابين ريكتسيا ص. والآخر الذي أصاب طائر نقشارة الخشب (فيلوسكوبوس سيبيلاتريكس) في أنتيكيثيرا 2010 ، أصيب ب R. aeschlimannii.

الجدول 3

أنواع القراد ومعدل الإصابة بها ريكتسياالنيابة. لكل مرحلة من مراحل التطوير

أنواع القرادمرحلة القرادرقم المصابة R. aeschlimanniiرقم المصابة R. افريقيارقم المصابة ريكتسياص.عدد القراد المصابة (العدد الإجمالي للقراد)
Hyalomma marginatumم.يرقة 73 11 7 1 81 (189*)
& # x000a0 حورية 227 & # x02009& # x000b1 & # x020091 **4 9 2 240 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 ** (459)
روفيبس هيالومايرقة & # x000a0 & # x000a0 1 3 1 (2)
& # x000a0 حورية 7 & # x000a0 & # x000a0 7 (7)
Hyalomma marginatums.s.حورية 1 & # x000a0 & # x000a0 1 (1)
Ixodes frontalisيرقة & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 0 (4)
& # x000a0 حورية 4 & # x000a0 1 4 5 (15)
& # x000a0 بالغ (أنثى) & # x000a0 & # x000a0 1 5 1 (4)
Ixodesالنيابة.يرقة & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 0 (3)
& # x000a0 حورية & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 0 (1)
أمبليوماص.حورية & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 0 (1)
Haemaphysalisص.حورية 1 & # x000a0 1 6 2 (2)
ريسيفالوسص.حورية & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 0 (2)
أنواع غير محددةمرحلة غير معروفة 5 1 9 7 15 (44)
المجموع& # x000a0318 & # x02009 & # x000b1 & # x020091629353 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 (734)

* تم تجميع يرقة واحدة مع حورية واحدة ، ** تتكون المجموعة الأولى من حورية واحدة ويرقة واحدة. واحد 1 ريكتسيا ص. (84751) وستة محتملة R. aeschlimannii ، 2. اثنان ريكتسيا ص. (84748 و 84607) وسبعة محتملة R. aeschlimannii 3. واحد ريكتسيا ص. (84609) ، 4. واحد ممكن R. monacensis (113618) ، 5. واحد ريكتسيا ص. (84154) 6. واحد ريكتسيا ص. (84594) ، 7. اثنان محتملان R. افريقيا وسبعة محتملة R. aeschlimannii.

الجدول 4

القراد المصابة بغيرها ريكتسياالنيابة. من ريكتسيا إيشليماني

موقع العينةأنواع الطيورأنواع القرادالمرحلة القراد ريكتسيامحيطرقم تعريف العينة*
كابري 2009 شجرة حفرة Ixodes frontalisأنثى ريكتسيا ص. 84154
أنتيكيثيرا 2009 حديقة الدخلة Haemaphysalis ص. حورية ريكتسيا ص. 84594
& # x000a0 سيدج الدخلة H. marginatum م. حورية ريكتسيا ص. 84607
& # x000a0 & # x000a0 روفيبس هيالومايرقة ريكتسيا ص. 84609
كابري 2010 صائد الذباب الأوروبي Ixodes frontalisحورية ربما ر113618
أنتيكيثيرا 2010 بداية حمراء مشتركة H. marginatum م. يرقة R. افريقيا& # x000a0
& # x000a0 أغنية القلاع H. marginatum م. حورية R. افريقيا& # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 H. marginatum م. حورية R. افريقيا& # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 H. marginatum م. حورية R. افريقيا& # x000a0
& # x000a0 أوراسيا siskin H. marginatum م. حورية R. افريقيا& # x000a0
& # x000a0 أغنية القلاع لا توجد صور & # x000a0 R. افريقيا& # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 لا توجد صور & # x000a0 R. افريقيا (محتمل) & # x000a0
& # x000a0 الحسون الأوروبي لا توجد صور & # x000a0 R. افريقيا (محتمل) & # x000a0
& # x000a0 نقشارة القصب العظيم H. marginatum م. حورية ريكتسيا ص. 84748
& # x000a0 صفراء ذهبي H. marginatum م. يرقة ريكتسيا ص. 84751
& # x000a011 طيور فردية15 القراد الفردي& # x000a0& # x000a0& # x000a0

* يتم عرض بيانات التسلسل لهذه العينات في الجدول & # x000a0 6.

الجدول 5

نتيجة مقارنة ضرب الانفجار في تحديد هوية التسلسلات المضخمة

رقم تعريف العينة ompBضرب الانفجار 17 & # x000a0kDaضرب الانفجار جلتضرب الانفجار ompAضرب الانفجار
84154 219/222 كانديداتوس R. امبليومي [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003334"، "term_id": "378930552"، "term_text": "CP003334" >> CP003334 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" JN378402 "،" term_id ":" 359720369 "،" term_text ":" JN378402 ">> JN378402] اختصار الثاني & # x000a0 اختصار الثاني & # x000a0 اختصار الثاني & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 R. helvetica [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "HQ232249"، "term_id": "325485113"، "term_text": "HQ232249" >> HQ232249 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" HQ232247 "،" term_id ":" 325485109 "،" term_text ":" HQ232247 ">> HQ232247] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 R. امبليومي [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AF479763"، "term_id": "28628561"، "term_text": "AF479763" >> AF479763] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 غير مثقف Rickettsia sp. استنساخ CsfC2 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "EU407140"، "term_id": "170294178"، "term_text": "EU407140" >> EU407140] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
84594 424/431 الريكتسيا س. T170-B [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "JQ727680"، "term_id": "429557687"، "term_text": "JQ727680" >> JQ727680] 394/394 R. raoultiiاختصار الثاني & # x000a0 اختصار الثاني & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 R. heilongjiangensis [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP002912"، "term_id": "340807448"، "term_text": "CP002912" >> CP002912 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" AY280712 "،" term_id ":" 30843331 "،" term_text ":" AY280712 ">> AY280712] * & # x000a0 الريكتسيا س. RpA4 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 الريكتسيا س. IG-1 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "EF219461"، "term_id": "146150149"، "term_text": "EF219461" >> EF219461] & # x000a0 الريكتسيا س. أرانها & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 كانديداتوس R. gravesii& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
84607 428/431 R. slovaca [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003375"، "term_id": "379773655"، "term_text": "CP003375" >> CP003375 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" CP002428 "،" term_id ":" 360041315 "،" term_text ":" CP002428 ">> CP002428] * 392/392 كانديداتوس ص. antechini [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "DQ372953"، "term_id": "87115964"، "term_text": "DQ372953" >> DQ372953] اختصار الثاني & # x000a0 اختصار الثاني & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 ر.باركيري [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003341"، "term_id": "378935695"، "term_text": "CP003341" >> CP003341 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" FJ644549 "،" term_id ":" 256807261 "،" term_text ":" FJ644549 ">> FJ644549] * 392/394 R. ريكتسي [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "KC845924"، "term_id": "515020467"، "term_text": "KC845924" >> KC845924 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" CP003311 "،" term_id ":" 376331083 "،" term_text ":" CP003311 ">> CP003311] * & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 R. sibirica [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "HM050273"، "term_id": "296409948"، "term_text": "HM050273" >> HM050273 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" AF123722 "،" term_id ":" 6969959 "،" term_text ":" AF123722 ">> AF123722] & # x000a0 ر.باركيري [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003341"، "term_id": "378935695"، "term_text": "CP003341" >> CP003341 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" EF689732 "،" term_id ":" 154125520 "،" term_text ":" EF689732 ">> EF689732] * & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 ر.كونوري [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AE006914"، "term_id": "25307999"، "term_text": "AE006914" >> AE006914 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" AF123726 "،" term_id ":" 6969967 "،" term_text ":" AF123726 ">> AF123726] * & # x000a0 ر. فيليبى [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003308"، "term_id": "376328387"، "term_text": "CP003308" >> CP003308] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 الريكتسيا س. BJ-90 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AY331393"، "term_id": "32967781"، "term_text": "AY331393" >> AY331393] & # x000a0 R. الطاووس [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP001227"، "term_id": "238624311"، "term_text": "CP001227" >> CP001227 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" AF260571 "،" term_id ":" 7739784 "،" term_text ":" AF260571 ">> AF260571] * & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 الريكتسيا س. NOD [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "EU567178"، "term_id": "171705100"، "term_text": "EU567178" >> EU567178] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
84609 220/222 R. slovaca [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003375"، "term_id": "379773655"، "term_text": "CP003375" >> CP003375 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" CP002428 "،" term_id ":" 360041315 "،" term_text ":" CP002428 ">> CP002428] * 392/392 كانديداتوس ص. antechini [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "DQ372953"، "term_id": "87115964"، "term_text": "DQ372953" >> DQ372953] اختصار الثاني & # x000a0 اختصار الثاني & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 ر.باركيري [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003341"، "term_id": "378935695"، "term_text": "CP003341" >> CP003341 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" FJ644549 "،" term_id ":" 256807261 "،" term_text ":" FJ644549 ">> FJ644549] * 392/394 R. ريكتسي [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "KC845924"، "term_id": "515020467"، "term_text": "KC845924" >> KC845924 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" CP003311 "،" term_id ":" 376331083 "،" term_text ":" CP003311 ">> CP003311] * & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 R. ريكتسي [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003311"، "term_id": "376331083"، "term_text": "CP003311" >> CP003311] & # x000a0 ر.باركيري [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003341"، "term_id": "378935695"، "term_text": "CP003341" >> CP003341 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" EF689732 "،" term_id ":" 154125520 "،" term_text ":" EF689732 ">> EF689732] * & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 ر. فيليبى [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003308"، "term_id": "376328387"، "term_text": "CP003308" >> CP003308] & # x000a0 ر. فيليبى [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP003308"، "term_id": "376328387"، "term_text": "CP003308" >> CP003308] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 R. sibirica [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "HM050273"، "term_id": "296409948"، "term_text": "HM050273" >> HM050273 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" AF123722 "،" term_id ":" 6969959 "،" term_text ":" AF123722 ">> AF123722] & # x000a0 R. الطاووس [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP001227"، "term_id": "238624311"، "term_text": "CP001227" >> CP001227 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" AF260571 "،" term_id ":" 7739784 "،" term_text ":" AF260571 ">> AF260571] * & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 ر.كونوري [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AE006914"، "term_id": "25307999"، "term_text": "AE006914" >> AE006914 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" AF123726 "،" term_id ":" 6969967 "،" term_text ":" AF123726 ">> AF123726] * & # x000a0 الريكتسيا س. NOD [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "EU567178"، "term_id": "171705100"، "term_text": "EU567178" >> EU567178] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 R. mongolotimonae [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "DQ097083"، "term_id": "73620233"، "term_text": "DQ097083" >> DQ097083 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" AF123715 "،" term_id ":" 6969945 "،" term_text ":" AF123715 ">> AF123715] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 الريكتسيا س. BJ-90 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AY331393"، "term_id": "32967781"، "term_text": "AY331393" >> AY331393] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 غير مثقف Rickettsia sp. استنساخ B3 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "DQ019321"، "term_id": "66095823"، "term_text": "DQ019321" >> DQ019321] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
84748 185/187 كانديداتوس R. hoogstraalii [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "EF629536"، "term_id": "156938434"، "term_text": "EF629536" >> EF629536] 392/392 الريكتسيا س. Torishima-CC1 [<"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "AB242434" ، "term_id": "121309499" ، "term_text": "AB242434" >> AB242434] 734/734 ر. التعايش الداخلي [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "DQ081187"، "term_id": "71564262"، "term_text": "DQ081187" >> DQ081187] اختصار الثاني & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 387/387** الريكتسيا س. Scc31 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "DQ105801"، "term_id": "70906147"، "term_text": "DQ105801" >> DQ105801] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 386/386** ر. التعايش الداخلي [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "DQ081185"، "term_id": "71564258"، "term_text": "DQ081185" >> DQ081185] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 382/382** كانديداتوس R. hoogstraalii [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "FJ767736"، "term_id": "255103358"، "term_text": "FJ767736" >> FJ767736] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
84751 427/431 الريكتسيا س. T170 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "JQ727680"، "term_id": "429557687"، "term_text": "JQ727680" >> JQ727680] 394/394 الريكتسيا س. LON-13 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AB516961"، "term_id": "256353419"، "term_text": "AB516961" >> AB516961] 791/791 الريكتسيا س. Mie180 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "JQ697958"، "term_id": "383088643"، "term_text": "JQ697958" >> JQ697958] 584/587 الريكتسيا س. HlR / D91 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "KC888951"، "term_id": "528744756"، "term_text": "KC888951" >> KC888951]
& # x000a0 & # x000a0 R. heilongjiangensis [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP002912"، "term_id": "340807448"، "term_text": "CP002912" >> CP002912 / <"type": " entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" AY280712 "،" term_id ":" 30843331 "،" term_text ":" AY280712 ">> AY280712] * & # x000a0 الريكتسيا س. LON-2 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AB516960"، "term_id": "256353417"، "term_text": "AB516960" >> AB516960] & # x000a0 الريكتسيا س. LON-13 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AB516964"، "term_id": "256353425"، "term_text": "AB516964" >> AB516964] 583/587 الريكتسيا س. FUJ98 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AF169629"، "term_id": "9280337"، "term_text": "AF169629" >> AF169629]
& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 R. marmionii [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AY737683"، "term_id": "52694874"، "term_text": "AY737683" >> AY737683] & # x000a0 & # x000a0 485/488** الريكتسيا س. LON-13 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AB516963"، "term_id": "256353423"، "term_text": "AB516963" >> AB516963]
& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 الريكتسيا س. Hf151 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AB114816"، "term_id": "33146354"، "term_text": "AB114816" >> AB114816] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 الريكتسيا س. Hl550 [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AB114805"، "term_id": "33146332"، "term_text": "AB114805" >> AB114805] & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 & # x000a0
113618222/222R. monacensis [<"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "JX625150"، "term_id": "411170283"، "term_text": "JX625150" >> JX625150]اختصار الثاني& # x000a0اختصار الثاني& # x000a0اختصار الثاني& # x000a0

* مثالان ** التسلسل المحفور في NCBI GenBank أقصر من تسلسلنا.

Rickettsia spp. عدوى القراد

من 14.789 طائرًا تم أسر 2.7٪ (398 / 14.789) كانت مصابة بالقراد 53٪ (209/398) من هذه الطيور كانت تحمل القراد إيجابيًا ل ريكتسيا النيابة. وعموما ريكتسيا كان معدل الإصابة 52٪ للحوريات و 41.5 & # x02009 & # x000b1 & # x020090.5٪ لليرقات. انتشار وتوزيع ريكتسيا الأنواع في 353 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 علامات التجزئة الإيجابية لـ PCR ، فيما يتعلق بموقع التجميع والسنة ، ملخصة في الجدول & # x000a0 6. حدثت طيور موبوءة متعددة ، وحدث فرد واحد من Sedge Warbler (Acrocephalus schenobaenus) حمل ثمانية يرقات من القراد (الجداول & # x000a0 2 ، & # x200B ، 3 ، 3 ، & # x200B ، 4 4 ، & # x200B and5) ، 5) ، أصيب ثلاثة منها R. aeschlimannii، ثلاث يرقات سلبية (كلها تغذت بشكل كامل) واثنتان من نوع غير معروف من اليرقات ريكتسيا (ضع علامة في 84607 و 84609 ، جدول & # x000a0 5). صرد ودشات خشبي واحد (لانيوس سيناتور) ، كان 19 محتقناً H. marginatum م. القراد ، منها أربع حوريات كانت سلبية بالنسبة لها ريكتسيا وأصيبت بالعدوى DNA و 12 حورية وثلاث يرقات R. aeschlimannii. هازجة القصب العظيم (Acrocephalus arundinaceus) تم القبض على أنتيكيثيرا تحمل ست حوريات ، أربعة منها مصابة R. aeschlimannii ، واحد مع مجهول ريكتسيا (ضع علامة 84748 ، جدول & # x000a0 5) ، بينما كانت الحورية السادسة سالبة لـ ريكتسيا النيابة. فيما يتعلق بمجمع أنواع القراد السائد H. marginatum م., 330 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 من 658 قراد أصيبوا بالعدوى ريكتسيا spp. ، تم تحديد 93 ٪ منها على أنها R. aeschlimannii.

الجدول 6

الانتشار وموقع التجميع وسنة ريكتسياالأنواع في القراد إيجابي PCR

& # x000a0 أنتيكيثيراكابريالمجموع
& # x000a02009201020092010& # x000a0
R. aeschlimannii82 80 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 99 57 318
محتمل R. aeschlimannii3 7 3 7 20
R. افريقيا& # x000a0 6 & # x000a0 & # x000a0 6
محتمل R. افريقيا& # x000a0 2 & # x000a0 & # x000a0 2
ريكتسيا النيابة. 3 1 1 & # x000a0 5
المستطاع R. monacensis& # x000a0 & # x000a0 & # x000a0 1 1
المستطاع ريكتسيا ص. لون 13 & # x000a0 1 & # x000a0 & # x000a0 1
المجموع الفرعي88 97 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 103 65 & # x000a0
المجموع185 & # x02009 & # x000b1 & # x020091168353 & # x02009 & # x000b1 & # x020091

من بين 27 Ixodes القراد ، خمسة أنا أمامي أصيبت الحوريات ريكتسيا النيابة. أربعة من هذه الحوريات ، تم جمعها جميعًا في عام 2010 في أنتيكيثيرا ، أصيبت بالعدوى R. aeschlimannii والحورية الخامسة ، التي جمعت من Pied Flycatcher (Ficedula Hypoleuca) في كابري ، ربما أصيب ب R. monacensis (فقط منتج PCR المتداخل لـ ompB تم تضخيم الجين وتسلسله علامة 113618 ، الجدول & # x000a0 5).

في هذه الدراسة تم جمع أربعة حشرات بالغة فقط وتم جمعها جميعًا أنا أمامي إناث ، ثلاث منهن غير مصابات. تمت إزالة القراد البالغ الرابع من حفرة الشجرة (Anthus trivialis) في كابري وأصيبت بمرض مجهول ريكتسيا الأنواع (علامة 84154 ، الجدول & # x000a0 5).

ريكتسيا تكوين الأنواع

انتشار ريكتسيا النيابة. في جميع عينات القراد البالغ عددها 734 تم تحديدها من خلال تحليل جميع العينات الإيجابية بواسطة تفاعل البوليميراز المتسلسل في الوقت الحقيقي. امتدت نتائج PCR في الوقت الفعلي من 3 إلى 9.0 * 10 6 نسخ من جلت جين / & # x003bcl ، متوسط ​​175000 نسخة / & # x003bcl. إذا كان هناك تضخيم وتسلسل ناجح لأي من الجينات من PCRs التقليدية ، فقد اعتبرت العينات إيجابية لـ ريكتسيا. عند مقارنة التسلسلات المضخمة تم استبعاد مناطق التمهيدي.

R. aeschlimannii

تحديد الأنواع ريكتسيا عن طريق تسلسل جزء من ompB نجح الجين في 306 عينة (كدنا) ، تطابق 300 من التسلسلات التي تم الحصول عليها R. aeschlimannii [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AF123705"، "term_id": "6969925"، "term_text": "AF123705" >> AF123705، <"type" : "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "HM050278"، "term_id": "296409950"، "term_text": "HM050278" >> HM050278] على 430 من 431 موضعًا. كل متواليات R. aeschlimannii كانت متطابقة وشاركت في انتقال في موضع واحد يُشار إليه بالرقم الأساسي 4549 مقارنة بالتسلسل المودع <"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "AF123705" ، "term_id": "6969925 "،" term_text ":" AF123705 ">> AF123705 وأيضًا انتقال على رقم الأساس 4473 مقارنة بالتسلسل المودع <" type ":" entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" HM050278 "،" term_id ":" 296409950 "،" term_text ":" HM050278 ">> HM050278. تم وضع كلا التحولات في منتصف التسلسل المشترك حيث تتداخل قراءات كلا البادئين ، مما يجعل من المرجح أن يكون تغييرًا دقيقًا. الاختلاف الموجود في الموضع المذكور أعلاه 4549 ، مقارنة بـ <"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "AF123705" ، "term_id": "6969925" ، "term_text": " AF123705 ">> AF123705 ، لا يغير تسلسل البروتين ، ومع ذلك ، فإن تبادل النيوكليوتيدات مقارنة بـ <" type ":" entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" HM050278 "،" term_id ":" 296409950 "،" term_text ":" HM050278 ">> يغير HM050278 تسلسل البروتين من الأحماض الأمينية ألانين إلى فالين ، لذلك تم وضع تعليقات توضيحية على هذا التسلسل [GenBank: <" type ":" entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" KF646134 "،" term_id ":" 673163842 "،" term_text ":" KF646134 ">> KF646134]. في حالة PCR واحد لـ ompB لم تسفر عن أي منتج أو إذا كانت هناك صعوبات في تحديد هوية ريكتسية ، فقد أعيد تشغيل العينات باستخدام PCR متداخلة لـ ompB أو PCR لملف ompAأو 17 & # x000a0kDa أو جلت الجينات (الجدول & # x000a0 1). متداخلة ompB أنتج PCR منتجًا بطول 222 نقطة أساس (عند طرح مناطق التمهيدي) لتحليل التسلسل ، وفيما يتعلق بـ R. aeschlimannii ، الفرق مقارنة بأقرب الأنواع ، R. raoultii، هو فقط 2 & # x000a0nt. ل 15 من العينات ، تسلسل متداخل ompB تم استكمال المنتج بواحد أو كليهما جلت و ompA (590 & # x000a0bp) ، حيث تطابقت المنتجات بنسبة 100٪ مع R. aeschlimannii [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "HM050289" ، "term_id": "296409936" ، "term_text": "HM050289" >> HM050289 (جلت)، <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "HM050290"، "term_id": "296409966"، "term_text": "HM050290" >> HM050290 (ompA)]. لعينتين ، تضخيم ompB كان التسلسل غير ناجح. تم تضخيم هذه العينات وتسلسلها بدلاً من ذلك لكل من جلت و ompA الجينات ، وكلاهما له تطابق تسلسل بنسبة 100٪ مع R. aeschlimannii. أدى هذا أخيرًا إلى تحديد 318 & # x02009 & # x000b1 & # x020091 مع تأكيد R. aeschlimannii العدوى وعشرين عينة أخرى تم تسلسلها بنجاح فقط للجزء المتداخل الأقصر من ompB التسلسل والحكم عليها على أنها محتملة R. aeschlimannii. من العينات التي تميزت بالفعل R. aeschlimannii، 114 تم اختياره لتسلسل منتج الجين 17 & # x000a0kDa المضخم. التسلسلات المودعة حاليًا في GenBank تمثل جين 17 & # x000a0kDa لـ R. aeschlimannii، منها أطول تسلسل [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "DQ379979"، "term_id": "87295273"، "term_text": "DQ379979" >> DQ379979] هو 357 & # x000a0bp ، كلها أقصر من المنتجات التي تم تضخيمها في هذا المشروع. عند استبعاد منطقة التمهيدي ، كان طول التسلسلات التي تم تحليلها 394 & # x000a0bp. ومع ذلك ، فإن الجزء المقابل من التتابعات المودعة يتطابق مع 100٪ مع 67 من 114 تسلسل. تحتوي التسلسلات الـ 47 المتبقية على A في الموضع 237 ، مقارنة بالتسلسلات المودعة التي تحتوي على نوكليوتيد G في الموضع 237. تم إيداع كلا متغيري التسلسل اللذين تم العثور عليهما في GenBank وأرقام المدخل المشروحة <"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs ": <" text ":" KF646135 "،" term_id ":" 673163844 "،" term_text ":" KF646135 ">> KF646135 و <" type ":" entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ": "KF646136" ، "term_id": "673163846" ، "term_text": "KF646136" >> KF646136. النوعان من الطيور ، Whinchat و Whitethroat المشترك الذي ساهم في معظم القراد حمل فقط القراد المصاب بالعدوى. R. aeschlimannii.

R. افريقيا

أصيب ستة من القراد R. افريقيا. تضخيم وتسلسل أجزاء من ompB, ompA و جلت أسفرت الجينات عن تسلسلات مع تشابه 100٪ مع التسلسلات المودعة في GenBank ، على سبيل المثال <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "HQ335130"، "term_id": "316992312"، "term_text": "HQ335130" >> HQ335130. جميع القراد مصابة R. افريقيا تم جمعها في أنتيكيثيرا في ربيع عام 2010 من أربعة طيور مختلفة. كانت خمس قراد H. marginatum م. والسادس لم يمكن التعرف عليه. إحدى اليرقات المصابة انتشرت في ريدستارت (Phoenicurus phoenicurus). أربعة من النتائج الأخرى R. افريقيا كانوا من الحوريات ، ثلاثة منهم أتوا من نفس أغنية Thrush (توردوس فيلوميلوس) ، جنبًا إلى جنب مع اثنين من الحوريتين السلبيين لـ ريكتسيا النيابة. كانت الحورية الرابعة المصابة عبارة عن قراد واحد يصيب واحدًا من إجمالي ثلاث حشرات أوراسية تم جمعها (كاردوليس سبينوس). تم جمع القراد السادس غير المعروف من Song Thrush ، مع اثنين من القراد غير المعروفين المصابين R. aeschlimannii، أربع حشرات سالبة تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR) وعلامة واحدة غير محددة من المحتمل أن تكون مصابة R. افريقيا، (جدول & # x000a0 6). ثاني اكتشاف محتمل لـ R. افريقيا كان أيضًا في علامة غير محددة تم جمعها من طائر الحسون الأوروبي (كاردوليس كلوريس) ، جنبًا إلى جنب مع ثلاث علامات سلبية لـ PCR. متداخلة ompB تسلسل R. افريقيا لديه تمييز نيوكليوتيد واحد فقط من عدد من SFG rickettsae المختلفة ، من بين أمور أخرى R. rickettsii، R. slovaca, ر.كونوري سلالة الهندي ، R. mongolotimonae و R. sibirica. هذا هو السبب في نجاح تسلسل العينتين فقط للجزء القصير (222 & # x000a0bp) من ompB ، بتطابق 100٪ مع R. افريقيا [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "HQ335130"، "term_id": "316992312"، "term_text": "HQ335130" >> HQ335130] تم اعتبارها على الأرجح R. افريقيا. تميزت جميع العينات الست بـ R. افريقيا تم أيضًا تسلسلها بنجاح للجزء المكبر من جين 17 & # x000a0kDa ، والذي يشترك بنسبة 100 ٪ (394/394 & # x000a0bp) في التشابه مع ريكتسيا ص. HymargITA12 [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide" و "attrs": <"text": "AJ781419" و "term_id": "51890255" و "term_text": "AJ781419" >> AJ781419] و 99٪ (390/394 & # x000a0bp) مع R. افريقيا ESF-5 [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "CP001612"، "term_id": "228021280"، "term_text": "CP001612" >> CP001612]. أسفرت القواعد الـ 394 عن إطار قراءة مفتوح من 131 من الأحماض الأمينية مع اثنين من البدائل الأساسية التي غيرت تكوين الأحماض الأمينية للبروتين من ليسين إلى أرجينين في موضع الأحماض الأمينية 72 ومن فالين إلى إيسولوسين في الموضع 96. لا شيء من الأقصر R. افريقيا تم العثور على تسلسل 17 & # x000a0kDa المشروح في GenBank بنسبة 100 ٪ مع التسلسل الطويل 394 نقطة أساس ، وقد تم إيداعه في GenBank كـ R. افريقيا [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "KF616137"، "term_id": "692515820"، "term_text": "KF616137" >> KF616137].

Rickettsia spp.

في سبع قراد ، يختلف الحمض النووي الريكتسي عن R. aeschlimannii و R. افريقيا تم التحقق. اثنان من هذه القراد ، واحد فقس حديثًا H. marginatum م. حورية وواحد روفيبس H. تم جمع يرقة (84607 و 84609 ، Table & # x000a0 5) من Sedge Warbler في Antikythira في عام 2009. كانت هذه القراد موجبة للحمض النووي الريكتسي وتشترك في التسلسلات المتطابقة للجين 17 & # x000a0kDa. لديهم أيضا متطابقة ompB متتاليات ، على الرغم من أن إحدى القراد كانت إيجابية في أول تفاعل تفاعل البوليميراز المتسلسل بينما كانت الأخرى إيجابية فقط في التداخل ompB PCR. ال ريكتسيا ص. تتطابق بشكل وثيق مع مجموعة R. conorii ، R. rickettsii, ر.باركيري, R. افريقيا و R. slovaca لكن التطابق لم يكن 100٪ لأي من التسلسلين. واحد أنا أمامي الحورية (علامة 113618) لديها عدد قليل نسبيًا من النسخ (978 نسخة / & # x003bcl) في PCR في الوقت الحقيقي والمنتج المتداخل فقط من ompB كان من الممكن تضخيم الجين. أعطى تسلسل المنتج المضخم مع طرح مناطق التمهيدي تطابقًا بنسبة 100٪ مع 222 & # x000a0bp من R. monacensis [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "JX625150" ، "term_id": "411170283" ، "term_text": "JX625150" >> JX625150]. واحد من ستة H. marginatum م. الحوريات (القراد 84748 ، الجدول & # x000a0 6) التي تم جمعها من طائر القصب العظيم المحاصر في أنتيكيثيرا ، أصيب ب ريكتسيا الأنواع ، منها جزء 187 & # x000a0bp من ompB تم تسلسل الجين وتطابق 185 & # x000a0bp مع Candidatus ريكتسيا هوجستراالي [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "EF629536"، "term_id": "156938434"، "term_text": "EF629536" >> EF629536]. بالنسبة إلى جلت تم تضخيم الجين 734 & # x000a0bp ومطابقته بنسبة 100٪ التعايش الداخلي للريكتسيا [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide" و "attrs": <"text": "DQ081187" و "term_id": "71564262" و "term_text": "DQ081187" >> DQ081187] و 17 & # تم تسلسل جين x000a0kDa بنجاح للجزء بأكمله وكانت أقرب تطابق 392/392 & # x000a0bp مع ريكتسيا ص. Torishima-CC1 [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "AB242434" ، "term_id": "121309499" ، "term_text": "AB242434" >> AB242434]. ل ر. التعايش الداخلي و Candidatus R. hoogstraalii ، تم توضيح تسلسل 17 & # x000a0kDa الأقصر في GenBank والتسلسل من التجزئة 84748 يطابق 100٪ مع كليهما ، 386/386 [<"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "DQ081185"، " term_id ":" 71564258 "،" term_text ":" DQ081185 ">> DQ081185] و 382/382 [<" type ":" entrez-nucleotide "،" attrs ": <" text ":" FJ767736 "،" term_id " : "255103358" ، "term_text": "FJ767736" >> FJ767736]. أربعة من الحوريات الخمس الأخرى التي تم جمعها من نفس الطائر أصيبت بالعدوى R. aeschlimannii.

صفراء ذهبية (أوريولوس أوريولوس) التي تم الاستيلاء عليها في أنتيكيثيرا في عام 2010 ، حملت واحدة هيالوما يرقة (علامة 84751) مصابة بـ a ريكتسيا ص. تسلسل جلت و 17 & # x000a0kDa منتجات تضخيم الجينات التي تطابق كلاهما بنسبة 100٪ ريكتسيا ص. LON-13 [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "AB516964" ، "term_id": "256353425" ، "term_text": "AB516964" >> AB516964 ، < "type": "entrez-nucleotide" ، "attrs": <"text": "AB516961" ، "term_id": "256353419" ، "term_text": "AB516961" >> AB516961]. ال ompA تطابق التسلسل من نفس العينة مع تسلسل LON-13 الأقصر المشروح في 485/488 & # x000a0bp [GenBank: <"type": "entrez-nucleotide"، "attrs": <"text": "AB516963"، "term_id": "256353423" ، "term_text": "AB516963" >> AB516963]. ل ompB ، لا توجد تسلسلات مشروحة في NCBI GenBank فيما يتعلق بـ LON-13.

نتائج الانفجار لجميع السبعة ريكتسيا التسلسلات والاختلافات الصغيرة في التسلسل وأهمية تقييم التسلسلات المتعددة قبل تحديد هوية الأنواع موضحة في الجدول & # x000a0 5 [31].


أفضل الممارسات للوقاية من الأمراض المنقولة بالنواقل في الكلاب والبشر

Filipe Dantas-Torres، Domenico Otranto، in Trends in Parasitology، 2016

الأمراض المنقولة بالنواقل أثناء التنقل

تتزايد العديد من الأمراض المنقولة بالنواقل (مثل داء لايم وداء الليشمانيات) للإنسان والكلاب من حيث الإصابة والتوزيع الجغرافي في جميع أنحاء العالم [1،14-16]. كما تم اكتشاف العديد من مسببات الأمراض التي ينقلها البعوض والقراد خلال العقود القليلة الماضية. تشمل الأمثلة على الأمراض التي ظهرت (عادت) في مناطق مختلفة من العالم داء لايم ، والتهاب الدماغ الذي ينقله القراد ، وحمى القرم والكونغو النزفية ، وحمى الضنك ، وحمى غرب النيل ، وحمى الشيكونغونيا ، والطاعون ، وداء البارتونيلا ، والعديد من القراد المنقولة. الريكتسيوس [15-17]. تم تسهيل الاكتشافات الحديثة ليس فقط من خلال تعميم تقنيات البيولوجيا الجزيئية (على سبيل المثال ، تسلسل تفاعل البوليميراز المتسلسل والحمض النووي) ، ولكن أيضًا من خلال زيادة وعي الباحثين والأطباء والأطباء البيطريين وغيرهم من المهنيين الصحيين.

تم الكشف عن عدد متزايد من مسببات أمراض الريكتسي في الكلاب والبشر على مدى العقود القليلة الماضية [14 ، 17 ، 18]. وتشمل هذه البلعمة Anaplasma, بلاتيس أنابلازما, إيرليشيا كانيس, إرليشيا شافينسيس, إيرليشيا إيوينج, إرليشيا موريس, ريكتسيا ريكتسي, ريكتسيا كونوري, ريكتسيا ماسيليا ، جبل بانولا إرليخيا, المبيضات Neoehrlichia mikurensis، والعديد من الحمى المرقطة الريكتسية [14 ، 19 - 21]. في بعض الحالات ، تم اكتشاف هذه الكائنات لأول مرة في القراد ، وبعد ذلك تم التعرف عليها بالتأكيد على أنها مسببات الأمراض البشرية [18]. وهذا يعني أن بعض أنواع الريكتسية ذات الإمراضية غير المعروفة ، والتي تم استردادها مؤخرًا من القراد والحيوانات الأخرى ، قد تظهر في النهاية كممرضات بشرية [22]. في هذا الصدد ، يجب أن يعتمد تحديد كائن ريكتسي معين كسبب للمرض لدى البشر على العديد من البيانات السريرية والمخبرية ، بما في ذلك الاختبارات المصلية ، والتلوين الكيميائي المناعي ، وعزل زراعة الخلايا ، والطرق الجزيئية [23].

مثال نموذجي لممرض ناشئ مرتبط بالكلاب والبشر هو الديدان الخيطية Onchocerca lupi. وصفت في الأصل من الذئاب عام 1967 ، O. lupi تم التعرف بشكل متزايد على أنه سبب لأمراض العين في كل من الكلاب والبشر في العديد من البلدان الأوروبية ، وشمال إفريقيا ، والشرق الأوسط ، والولايات المتحدة الأمريكية [24–34]. الناقل البيولوجي لـ O. lupi لا يزال غير معروف [34] ، على الرغم من اكتشاف الحمض النووي للطفيلي مؤخرًا في الذباب الأسود (عائلة Simuliidae) في الولايات المتحدة [31].

مثال آخر على مسببات الأمراض الناشئة المنقولة بالنواقل الموجودة في الكلاب ، ولكن لم يتم الإبلاغ عنها في البشر حتى الآن ، هو رانجيليا فيتالي. ينتقل هذا الحيوان الأولي عن طريق قراد الكلب الأصفر Amblyomma aureolatum ويسبب مرضًا شديدًا يسمى داء الكلاب [35]. وُصِف داء رانجليوس في البرازيل لأول مرة في عام 1910 ، وقد ظل لعقود من الزمن كمرض غامض وغير معروف على نطاق واسع ، ولكن تم التعرف عليه الآن في بلدان أمريكا الجنوبية الأخرى ، بما في ذلك أوروغواي والأرجنتين [36،37]. من الناحية السريرية ، يشبه المرض الأمراض الأخرى التي تنقلها الكلاب ، مثل داء البابيزيا وداء إيرليخ ، مما قد يعقد التشخيص في المناطق التي تحدث فيها هذه الأمراض في التعايش.

قد يكون ظهور الأمراض المنقولة بالنواقل محكومًا بعدة عوامل ، بما في ذلك تغير المناخ ، وإزالة الغابات الاستوائية ، وتغير استخدام الأراضي ، والتحضر ، ونمو السكان وهجرتهم ، وتجزئة الموائل ، وتحركات الحيوانات ، وفقدان التنوع البيولوجي [15]. قد يكون للتركيز المتزايد على أبحاث الأمراض المنقولة بالنواقل والتوعية بين الأطباء البيطريين والأطباء دور أيضًا في التعرف على هذه الأمراض في مناطق جغرافية جديدة. على سبيل المثال ، أظهرت الدراسات الحديثة تغييرات واضحة في التوزيع الجغرافي لناقلات القراد المهمة ، مثل قراد حبة الخروع Ixodes ricinus واللولبيات بوريليا برغدورفيرية، العامل المسبب لمرض لايم [38،39]. التوزيع المتغير لـ أنا ricinus تم ربطه بتغير المناخ ، وبدرجة أقل بالتحركات السكانية المضيفة. من الأمثلة الحديثة الأخرى على تغيير أنماط التوزيع وزيادة حدوث الأمراض التي تنقلها ناقلات الكلاب انتشار داء الفيلاريات الكلابية باتجاه الجنوب والشمال ، على التوالي ، في إيطاليا [40]. إلى جانب زيادة وعي الأطباء البيطريين ، قد تكون هذه التغييرات ناجمة عن التغيرات المناخية التي أدت إلى توسع نواقل الفاصدة إلى المناطق الشمالية [41] وعن طريق إدخال وانتشار الزاعجة البيضاء خلال التسعينيات عبر مختلف المناطق الإيطالية [42]. علاوة على ذلك ، قد يكون لانتقال الكلاب المصابة من المناطق الموبوءة إلى المناطق غير المستوطنة دور أيضًا في هذه العملية.

يؤثر التوزيع الحالي والمتغير لمسببات الأمراض المنقولة بالنواقل بشكل مباشر على الروتين اليومي للأطباء والأطباء البيطريين. في الواقع ، قد يؤثر إدخال مسببات الأمراض في مناطق جديدة على ممارساتهم السريرية ، ليس فقط لأنهم قد يكونوا غير مستعدين لتشخيص أمراض جديدة ، ولكن أيضًا لأن العدوى المشتركة قد تحجب الصورة السريرية وتؤخر التشخيص النهائي ، مما يؤدي في النهاية إلى زيادة خطر حدوث مضاعفات تهدد الحياة [43-46]. في الواقع ، هناك اعتراف متزايد بالعدوى المشتركة بين الحيوانات والبشر ، وكيف يمكن أن تؤثر على نتائج المرض. تعد الخرائط المحدثة والتعليم المستمر للوكالات الصحية والممرضات والأطباء والأطباء البيطريين أمرًا محوريًا لزيادة الوعي بالأمراض الناشئة التي تنقلها النواقل في مناطق مختلفة.


محتويات

تقليديًا ، ينقسم تطور حمى التيفود غير المعالجة إلى ثلاث مراحل متميزة ، تستمر كل منها حوالي أسبوع. خلال هذه المراحل ، يصبح المريض مرهقًا وهزيلًا. [18]

  • في الأسبوع الأول ، ترتفع درجة حرارة الجسم ببطء ، وتُلاحظ تقلبات الحمى مع بطء القلب النسبي (علامة فاجيت) ، والشعور بالضيق ، والصداع ، والسعال. يُلاحظ وجود دم في الأنف (رعاف) في ربع الحالات ، ومن الممكن أيضًا حدوث ألم في البطن. يحدث انخفاض في عدد خلايا الدم البيضاء المنتشرة (قلة الكريات البيض) مع قلة الكريات البيض وتكون ثقافات الدم النسبية لكترة اللمفاويات إيجابية السالمونيلا المعوية subsp. الأمعاء المصلي التيفية. عادة ما يكون اختبار Widal سلبيًا في الأسبوع الأول. [19]
  • في الأسبوع الثاني ، غالبًا ما يكون الشخص متعبًا جدًا بحيث لا يستطيع النهوض ، مع ارتفاع في درجة الحرارة في الهضبة حوالي 40 درجة مئوية (104 درجة فهرنهايت) وبطء القلب (تفكك ضغط الدم أو علامة فاجيت) ، بشكل كلاسيكي مع موجة نبض ثنائية النواة. يمكن أن يحدث الهذيان ، حيث يكون المريض غالبًا هادئًا ، ولكنه أحيانًا يصبح مضطربًا. وقد أدى هذا الهذيان إلى تلقي التيفود لقب "الحمى العصبية". تظهر بقع الورد على أسفل الصدر والبطن عند حوالي ثلث المرضى. يتم سماع صوت Rhonchi (أصوات التنفس الخشخشة) في قاعدة الرئتين. البطن منتفخة ومؤلمة في الربع السفلي الأيمن ، حيث يمكن سماع صوت قرقرة. يمكن أن يحدث الإسهال في هذه المرحلة ، لكن الإمساك شائع أيضًا. يتضخم الطحال والكبد (تضخم الكبد الطحال) ويؤلمان ، وترتفع ناقلة أمين الكبد. اختبار Widal إيجابي للغاية ، مع وجود أجسام مضادة لـ O و H. لا تزال ثقافات الدم إيجابية في بعض الأحيان في هذه المرحلة.
  • في الأسبوع الثالث من حمى التيفود ، يمكن أن يحدث عدد من المضاعفات:
      بسبب النزيف في بقع باير المزدحمة ، يمكن أن يكون هذا خطيرًا جدًا ، ولكنه عادة لا يكون مميتًا.
  • انثقاب الأمعاء في الدقاق البعيد هو اختلاط خطير للغاية وغالباً ما يكون قاتلاً. قد يحدث دون أعراض مثيرة للقلق حتى يحدث تسمم الدم أو التهاب الصفاق المنتشر.
  • أمراض الجهاز التنفسي مثل الالتهاب الرئوي والتهاب الشعب الهوائية الحاد
  • أعراض عصبية نفسية (توصف بأنها "هذيان تمتم" أو "سبات غيبوبة") ، مع انتقاء أغطية السرير أو الأشياء الخيالية
  • الخراجات النقيلية والتهاب المرارة والتهاب الشغاف والتهاب العظم
  • لا تزال الحمى شديدة الارتفاع وتتأرجح قليلاً جدًا خلال 24 ساعة. يترتب على ذلك الجفاف ويصاب المريض بحالة من الهذيان (حالة التيفود). يصاب ثلث الأفراد المصابين بطفح جلدي بقعي على الجذع.
  • يمكن أحيانًا ملاحظة انخفاض عدد الصفائح الدموية (قلة الصفيحات). [20]
  • تحرير البكتيريا

    البكتيريا سالبة الجرام التي تسبب حمى التيفود هي السالمونيلا المعوية subsp. الأمعاء المصلي التيفية. استنادًا إلى مخطط التصنيف الفرعي MLST ، فإن نوعي التسلسل الرئيسيين لـ س. Typhi هي ST1 و ST2 ، والتي تنتشر حاليًا على مستوى العالم. [21] أظهر التحليل الجغرافي الجغرافي العالمي هيمنة النمط الفرداني 58 (H58) الذي ربما نشأ في الهند خلال أواخر الثمانينيات وينتشر الآن في جميع أنحاء العالم يحمل مقاومة متعددة الأدوية. [22] تم الإبلاغ عن مخطط تنميط جيني أكثر تفصيلاً في عام 2016 ويستخدم الآن على نطاق واسع. أعاد هذا المخطط تصنيف تسمية H58 إلى النمط الجيني 4.3.1. [23]

    تحرير الإرسال

    على عكس سلالات أخرى من السالمونيلا، لا توجد ناقلات حيوانية معروفة للتيفوئيد. [24] البشر هم الناقلون الوحيدون للبكتيريا. [24] S. المعوية subsp. ينتشر التيفي المصلي المعوي من خلال الطريق البرازي الفموي من الأفراد المصابين حاليًا ومن حاملي البكتيريا بدون أعراض. [24] الناقل البشري غير المصحوب بأعراض هو الشخص الذي لا يزال يفرز بكتيريا التيفود في البراز بعد عام من المرحلة الحادة من العدوى. [24]

    يتم التشخيص عن طريق أي مزرعة للدم أو نخاع العظام أو البراز وباستخدام اختبار Widal (إظهار الأجسام المضادة ضد السالمونيلا المستضدات O- الجسدية و H- سوط). في الأوبئة والبلدان الأقل ثراءً ، بعد استبعاد الملاريا أو الزحار أو الالتهاب الرئوي ، يتم إجراء وقت تجربة علاجية مع الكلورامفينيكول بشكل عام أثناء انتظار نتائج اختبار Widal وثقافة الدم والبراز. [25]

    اختبار ويدال تحرير

    يستخدم اختبار Widal لتحديد الأجسام المضادة المحددة في مصل الأشخاص المصابين بالتيفوئيد باستخدام تفاعلات المستضد والأجسام المضادة.

    في هذا الاختبار ، يتم خلط المصل مع معلق بكتيري ميت من السالمونيلا يحتوي على مستضدات محددة عليه. إذا كان مصل المريض يحمل أجسامًا مضادة لتلك المستضدات ، فإنها تلتصق بها مكونة التكتل مما يدل على إيجابية الاختبار. إذا لم يحدث التكتل فإن الاختبار يكون سلبيا. اختبار Widal يستغرق وقتًا طويلاً وعرضة لنتائج إيجابية كاذبة كبيرة. قد يكون الاختبار أيضًا سلبيًا كاذبًا في المسار المبكر للمرض. ومع ذلك ، على عكس اختبار Typhidot ، فإن اختبار Widal يحدد كمية العينة بالمعاير. [26]

    اختبارات التشخيص السريع

    أظهرت الاختبارات التشخيصية السريعة مثل Tubex و Typhidot و Test-It دقة تشخيصية معتدلة. [27]

    تحرير Typhidot

    يعتمد الاختبار على وجود أجسام مضادة IgM و IgG محددة لمستضد 50Kd OMP محدد. يتم إجراء هذا الاختبار على غشاء نترات السليلوز حيث يكون محددًا S. typhi يتم توصيل بروتين الغشاء الخارجي كخطوط اختبار ثابتة. يحدد بشكل منفصل الأجسام المضادة IgM و IgG. يُظهر IgM إصابة حديثة بينما يشير IgG إلى الإصابة عن بُعد.

    تحتوي لوحة العينة في هذه المجموعة على IgG غرواني ذهبي مضاد للإنسان أو IgM ذهبي مضاد للإنسان. إذا كانت العينة تحتوي على أجسام مضادة IgG و IgM ضد تلك المستضدات ، فسوف تتفاعل وتتحول إلى اللون الأحمر. سيستمر هذا المركب في المضي قدمًا وسيتم ربط الأجسام المضادة IgG و IgM بخط الاختبار الأول حيث توجد مستضدات IgG و IgM مما يعطي شريطًا بلون وردي أرجواني. سيستمر هذا المركب في التحرك أكثر والوصول إلى خط التحكم الذي يتكون من الأجسام المضادة للفأر الأرانب التي تعمل على ثني الأجسام المضادة IgG أو IgM المضادة للفأر. الغرض الرئيسي من خط التحكم هو الإشارة إلى الانتقال الملائم ولون الكاشف. يصبح اختبار التيفيدوت إيجابيًا في غضون 2-3 أيام من الإصابة.

    يشير الشريطان الملونان إلى اختبار إيجابي. يشير النطاق الأحادي لخط التحكم إلى اختبار سلبي. يشير النطاق الفردي لأول خط ثابت أو عدم وجود نطاقات على الإطلاق إلى اختبارات غير صالحة. أهم قيود هذا الاختبار هو أنه ليس كميًا وأن النتيجة إيجابية أو سلبية فقط. [28]

    اختبار Tubex تحرير

    يحتوي اختبار Tubex على نوعين من الجسيمات جزيئات مغناطيسية بنية مطلية بمولد الضد وجزيئات مؤشر زرقاء مطلية بجسم مضاد O9. أثناء الاختبار ، إذا كانت الأجسام المضادة موجودة في المصل ، فسوف تلتصق بالجزيئات المغناطيسية البنية وتستقر عند القاعدة وتبقى جزيئات المؤشر الأزرق في المحلول مما يعطي اللون الأزرق الذي يشير إلى إيجابية الاختبار.

    إذا لم يكن المصل يحتوي على جسم مضاد ، فإن الجسيم الأزرق يلتصق بالجزيئات البنية ويستقر في الأسفل مع عدم وجود لون للمحلول مما يعني أن الاختبار سلبي وليس لديهم التيفوئيد. [29]

    الصرف الصحي والنظافة مهمان لمنع التيفود. يمكن أن ينتشر فقط في البيئات التي يكون فيها البراز البشري قادرًا على ملامسة الطعام أو مياه الشرب. يعد التحضير الدقيق للطعام وغسل اليدين أمرًا بالغ الأهمية لمنع التيفود. ساهم التصنيع ، وعلى وجه الخصوص ، اختراع السيارات ، بشكل كبير في القضاء على حمى التيفوئيد ، حيث أنه أزال مخاطر الصحة العامة المرتبطة بوجود روث الخيول في الشوارع العامة ، مما أدى إلى وجود عدد كبير من الذباب ، [30] مما أدى إلى تُعرف باسم ناقلات للعديد من مسببات الأمراض ، بما في ذلك السالمونيلا النيابة. [31] وفقًا لإحصاءات مراكز مكافحة الأمراض والوقاية منها بالولايات المتحدة ، أدت معالجة مياه الشرب بالكلور إلى انخفاض كبير في انتقال حمى التيفود في الولايات المتحدة. [32]

    تحرير التطعيم

    تم ترخيص لقاحين من لقاح التيفود للوقاية من التيفود: [10] لقاح Ty21a الحي الفموي (المباع باسم Vivotif بواسطة Crucell Switzerland AG) ولقاح التيفود متعدد السكاريد القابل للحقن (يُباع باسم Typhim Vi بواسطة Sanofi Pasteur و Typherix بواسطة GlaxoSmithKline) . كلاهما فعال ويوصى به للمسافرين إلى المناطق التي يتوطن فيها التيفود. يوصى باستخدام المعززات كل خمس سنوات للقاح الفموي وكل عامين للشكل القابل للحقن. [10] لا يزال لقاح الخلية الكاملة القديم المقتول مستخدمًا في البلدان التي لا تتوفر فيها المستحضرات الأحدث ، ولكن هذا اللقاح لم يعد موصى به للاستخدام لأنه يحتوي على معدل أعلى من الآثار الجانبية (بشكل رئيسي الألم والالتهاب في الموقع من الحقن). [33]

    للمساعدة في خفض معدلات حمى التيفوئيد في الدول النامية ، أقرت منظمة الصحة العالمية (WHO) استخدام برنامج التطعيم ابتداء من عام 1999. وقد أثبتت اللقاحات أنها وسيلة رائعة للسيطرة على تفشي المرض في المناطق التي ترتفع فيها نسبة الإصابة. بنفس القدر من الأهمية ، فهي أيضًا فعالة جدًا من حيث التكلفة. عادة ما تكون أسعار التطعيم منخفضة ، حيث تقل عن 1 دولار أمريكي للجرعة. لأن السعر منخفض ، فإن المجتمعات الفقيرة أكثر استعدادًا للاستفادة من اللقاحات. [34] على الرغم من أن برامج التطعيم ضد التيفود قد أثبتت فعاليتها ، إلا أنها وحدها لا تستطيع القضاء على حمى التيفود. [34] الجمع بين استخدام اللقاحات وزيادة جهود الصحة العامة هو الطريقة الوحيدة المثبتة للسيطرة على هذا المرض. [34]

    منذ تسعينيات القرن الماضي ، أوصت منظمة الصحة العالمية بلقاحين ضد حمى التيفود. يتم إعطاء لقاح ViPS عن طريق الحقن ، بينما يتم أخذ Ty21a من خلال كبسولات. يُنصح فقط الأشخاص الذين تبلغ أعمارهم عامين أو أكثر بالتطعيم بلقاح ViPS ، ويتطلب الأمر إعادة التطعيم بعد 2-3 سنوات بفاعلية لقاح 55-72٪. يوصى بلقاح Ty21a البديل للأشخاص الذين تبلغ أعمارهم 5 سنوات أو أكثر ، وله مدته 5-7 سنوات مع فعالية لقاح 51-67٪. وقد ثبت أن اللقاحين المختلفين يعتبران علاجًا آمنًا وفعالًا للسيطرة على الأمراض الوبائية في مناطق متعددة. [34]

    يتوفر أيضًا نسخة مقترنة بالتهاب الكبد أ. [35]

    سجلت نتائج تجربة المرحلة الثالثة من لقاح التيفود المتقارن (TCV) في ديسمبر 2019 حالات أقل بنسبة 81٪ بين الأطفال. [36] [37]

    علاج معالجة الجفاف عن طريق الفم

    قدمت إعادة اكتشاف علاج الجفاف عن طريق الفم في الستينيات طريقة بسيطة لمنع العديد من الوفيات الناجمة عن أمراض الإسهال بشكل عام. [38]

    تحرير المضادات الحيوية

    عندما تكون المقاومة غير شائعة ، يكون العلاج المختار هو الفلوروكينولون مثل سيبروفلوكساسين. [39] [40] وبخلاف ذلك ، فإن الجيل الثالث من السيفالوسبورين مثل سيفترياكسون أو سيفوتاكسيم هو الخيار الأول. [41] [42] [43] [44] سيفيكسيم هو بديل فموي مناسب. [45] [46]

    عندما تُعالج حمى التيفوئيد بشكل صحيح ، فإنها لا تكون قاتلة في معظم الحالات. تستخدم المضادات الحيوية ، مثل الأمبيسلين ، والكلورامفينيكول ، وتريميثوبريم-سلفاميثوكسازول ، والأموكسيسيلين ، والسيبروفلوكساسين ، بشكل شائع لعلاج حمى التيفوئيد. [47] يقلل علاج المرض بالمضادات الحيوية من معدل إماتة الحالات إلى حوالي 1٪. [48]

    بدون علاج ، يصاب بعض المرضى بالحمى المستمرة ، وبطء القلب ، وتضخم الكبد والطحال ، وأعراض في البطن ، وأحيانًا الالتهاب الرئوي. في المرضى ذوي البشرة البيضاء ، تظهر البقع الوردية ، التي تتلاشى عند الضغط ، على جلد الجذع في ما يصل إلى 20٪ من الحالات. في الأسبوع الثالث ، قد تتطور الحالات غير المعالجة إلى مضاعفات معدية معوية ودماغية ، والتي قد تكون قاتلة في ما يصل إلى 10-20٪ من الحالات. تم الإبلاغ عن أعلى معدلات إماتة بين الأطفال دون سن 4 سنوات. يصبح حوالي 2-5 ٪ من المصابين بحمى التيفود حاملين مزمنين ، حيث تستمر البكتيريا في القناة الصفراوية بعد زوال الأعراض. [49]

    تحرير الجراحة

    عادة ما يشار إلى الجراحة في حالة حدوث ثقب في الأمعاء. وجدت إحدى الدراسات أن معدل الوفيات لمدة 30 يومًا يبلغ 9 ٪ (8/88) ، وعدوى الموقع الجراحي بنسبة 67 ٪ (59/88) ، مع عبء المرض الذي تتحمله البلدان منخفضة الموارد في الغالب. [50]

    بالنسبة للعلاج الجراحي ، يفضل معظم الجراحين إغلاقًا بسيطًا للثقب مع تصريف الصفاق. يشار إلى استئصال الأمعاء الدقيقة للمرضى الذين يعانون من ثقوب متعددة. إذا فشل العلاج بالمضادات الحيوية في استئصال العربة الصفراوية الكبدية ، فيجب استئصال المرارة. يكون استئصال المرارة ناجحًا في بعض الأحيان ، خاصةً في المرضى الذين يعانون من حصوات المرارة ، ولكنه لا ينجح دائمًا في استئصال الحالة الحاملة بسبب العدوى الكبدية المستمرة. [51] [52]

    تحرير المقاومة

    نظرًا لأن مقاومة الأمبيسلين والكلورامفينيكول وتريميثوبريم-سلفاميثوكسازول والستربتومايسين أصبحت شائعة الآن ، لم تعد تستخدم هذه العوامل كخط علاج أول من حمى التيفوئيد. [53] يُعرف التيفوئيد المقاوم لهذه العوامل باسم التيفود المقاوم للأدوية المتعددة. [54]

    تعتبر مقاومة سيبروفلوكساسين مشكلة متزايدة ، خاصة في شبه القارة الهندية وجنوب شرق آسيا. تتحول العديد من المراكز من استخدام سيبروفلوكساسين كخط أول لعلاج التيفود المشتبه به الذي نشأ في أمريكا الجنوبية أو الهند أو باكستان أو بنغلاديش أو تايلاند أو فيتنام. بالنسبة لهؤلاء الأشخاص ، فإن علاج الخط الأول الموصى به هو سيفترياكسون. أيضًا ، تم اقتراح أن أزيثروميسين أفضل في علاج التيفود المقاوم لدى السكان من أدوية الفلوروكينولون والسيفترياكسون. [40] يمكن تناول أزيترومايسين عن طريق الفم وهو أقل تكلفة من سيفترياكسون الذي يُعطى عن طريق الحقن. [55]

    توجد مشكلة منفصلة في الاختبارات المعملية لتقليل الحساسية للسيبروفلوكساسين التوصيات الحالية هي أنه يجب اختبار العزلات في وقت واحد ضد سيبروفلوكساسين (CIP) وضد حمض الناليديكسيك (NAL) ، وأنه يجب الإبلاغ عن العزلات الحساسة لكل من CIP و NAL على أنها " حساسة للسيبروفلوكساسين "، ولكن يجب الإبلاغ عن اختبار العزلات الحساسة لـ CIP وليس لـ NAL على أنه" حساسية منخفضة للسيبروفلوكساسين ". ومع ذلك ، أظهر تحليل 271 عزلة أن حوالي 18٪ من العزلات ذات الحساسية المنخفضة للفلوروكينولونات ، الفئة التي ينتمي إليها CIP ، (MIC 0.125-1.0 مجم / لتر) لن يتم التقاطها بهذه الطريقة. [56]

    في عام 2000 ، تسببت حمى التيفود في ما يقدر بنحو 21.7 مليون مرض و 217000 حالة وفاة. [8] يحدث غالبًا عند الأطفال والشباب الذين تتراوح أعمارهم بين 5 و 19 عامًا. [57] في عام 2013 ، نتج عن ذلك حوالي 161000 حالة وفاة - انخفاضًا من 181000 حالة وفاة في عام 1990. [15] يعاني الرضع والأطفال والمراهقون في جنوب وسط وجنوب شرق آسيا من العبء الأكبر للمرض. [58] كما يتم الإبلاغ عن حالات تفشي حمى التيفود بشكل متكرر في أفريقيا جنوب الصحراء ودول جنوب شرق آسيا. [59] [60] [61] في عام 2000 ، حدث أكثر من 90٪ من المراضة والوفيات بسبب حمى التيفود في آسيا. [62] في الولايات المتحدة ، تحدث حوالي 400 حالة كل عام ، ويتم اكتساب 75٪ منها أثناء السفر دوليًا. [63] [64]

    تاريخياً ، قبل عصر المضادات الحيوية ، كان معدل إماتة الإصابة بحمى التيفود 10-20٪. اليوم ، مع العلاج السريع ، هو أقل من 1٪. [65] ومع ذلك ، فإن حوالي 3-5٪ من الأفراد المصابين يصابون بعدوى مزمنة في المرارة. [66] منذ ذلك الحين S. المعوية subsp. enterica serovar Typhi مقيد بشريًا ، وتصبح هذه الناقلات المزمنة المستودع الحاسم ، والذي يمكن أن يستمر لعقود لمزيد من انتشار المرض ، مما يزيد من تعقيد تحديد المرض وعلاجه. [52] في الآونة الأخيرة ، دراسة S. المعوية subsp. enterica serovar Typhi المرتبط بتفشي كبير وناقل على مستوى الجينوم يوفر رؤى جديدة حول التسبب في مسببات الأمراض. [67] [68]

    في الدول الصناعية ، أدى تحسين الصرف الصحي للمياه ومعالجة الأغذية إلى تقليل عدد الحالات. [69] الدول النامية ، مثل تلك الموجودة في أجزاء من آسيا وأفريقيا ، لديها أعلى معدلات حمى التيفود. تفتقر هذه المناطق إلى الوصول إلى المياه النظيفة ، وأنظمة الصرف الصحي المناسبة ، ومرافق الرعاية الصحية المناسبة. بالنسبة لهذه المناطق ، فإن الوصول إلى احتياجات الصحة العامة الأساسية ليس في المستقبل القريب. [70]

    في الفترة 2004-2005 ، أدى تفشي المرض في جمهورية الكونغو الديمقراطية إلى أكثر من 42000 حالة و 214 حالة وفاة. [57] منذ نوفمبر 2016 ، ظهرت في باكستان حمى التيفود المقاومة للأدوية على نطاق واسع (XDR). [71]

    في أوروبا ، وجد تقرير يستند إلى بيانات عام 2017 المسترجعة من نظام المراقبة الأوروبي (TESSy) عن توزيع حالات التيفود والحمى نظيرة التيفود المؤكدة أن 22 دولة من دول الاتحاد الأوروبي / المنطقة الاقتصادية الأوروبية أبلغت عن إجمالي 1098 حالة ، 90.9٪ منها كانت سفر- ذات الصلة ، تم الحصول عليها بشكل أساسي أثناء السفر إلى بلدان خاصة في جنوب آسيا. [72]

    تحرير الأوصاف التاريخية المبكرة

    كان وباء أثينا ، خلال الحرب البيلوبونيسية ، على الأرجح تفشيًا لحمى التيفود. [73] خلال الحرب ، تراجع الأثينيون إلى مدينة محاطة بأسوار هربًا من هجوم الأسبرطة. هذا التدفق الهائل للبشر إلى مساحة مركزة طغى على إمدادات المياه والبنية التحتية للنفايات ، مما أدى على الأرجح إلى ظروف غير صحية حيث أصبح الحصول على المياه العذبة أكثر صعوبة وأصبح جمع النفايات وإزالتها خارج أسوار المدينة أكثر صعوبة. [73] في عام 2006 ، فحص بقايا مقبرة جماعية من أثينا في وقت قريب من الطاعون (

    430 قبل الميلاد) أن أجزاء من الحمض النووي تشبه العصر الحديث س. تم الكشف عن DNA Typhi ، بينما يرسينيا بيستيس (طاعون)، الريكتسيا prowazekii (التيفوس) ، السل الفطريوفيروس جدري البقر و بارتونيلا هنسيلي لم يتم الكشف عنها في أي من البقايا التي تم اختبارها. [74]

    من المحتمل أن يكون الإمبراطور الروماني أوغسطس قيصر قد عانى إما من خراج في الكبد أو من حمى التيفوئيد ، ونجا باستخدام الحمامات المثلجة والكمادات الباردة كوسيلة لعلاج الحمى التي أصيب بها. [73] هناك تمثال للطبيب اليوناني أنطونيوس موسى الذي عالج الحمى.

    تحديد المرض والأدلة على الانتقال تحرير

    يُنسب إلى الأطباء الفرنسيين بيير فيديل بريتونو وبيير تشارلز ألكسندر لويس وصف حمى التيفوئيد بأنها مرض محدد فريد من نوعه عن التيفوس. أجرى كلا الطبيبين تشريحًا لجثث الأفراد الذين ماتوا في باريس بسبب الحمى - وأشاروا إلى أن العديد منهم لديهم آفات على بقع باير والتي ترتبط بأعراض مميزة قبل الموت. [73] كان الأطباء البريطانيون متشككين في التفريق بين التيفوئيد والتيفوس لأن كلاهما كان متوطنًا في بريطانيا في ذلك الوقت. ومع ذلك ، في فرنسا كان التيفود فقط موجودًا منتشرًا بين السكان. [73] أجرى بيير تشارلز ألكسندر لويس أيضًا دراسات حالة وتحليلات إحصائية لإثبات أن التيفود معدي - وأن الأشخاص الذين لم يصابوا بالمرض بالفعل بدوا محميين. [73] بعد ذلك ، أكد العديد من الأطباء الأمريكيين هذه النتائج ، ثم أقنع السير ويليام جينر أي متشككين متبقين أن التيفود هو مرض محدد يمكن التعرف عليه من خلال الآفات الموجودة في بقع باير من خلال فحص ستة وستين عملية تشريح من مرضى الحمى واستنتاج أن أعراض الصداع ، كان الإسهال وبقع الطفح الجلدي وآلام البطن موجودة فقط في المرضى الذين أصيبوا بعد ذلك بآفات معوية بعد الوفاة مما عزز ارتباط المرض بالقناة المعوية وقدم أول دليل على طريق الانتقال. [73]

    في عام 1847 ، علم ويليام بود بانتشار وباء حمى التيفود في كليفتون ، وحدد أن جميع السكان الـ13 الذين أصيبوا بالمرض والبالغ عددهم 34 يسحبون مياه الشرب من نفس البئر. [73] والجدير بالذكر أن هذه الملاحظة كانت قبل عامين من اكتشاف جون سنو لطريق المياه الملوثة كسبب لتفشي الكوليرا. أصبح بود فيما بعد مسؤول الصحة في بريستول وعمل على تأمين إمدادات المياه النظيفة ، ووثق المزيد من الأدلة على التيفود كمرض ينقله الماء طوال حياته المهنية. [73]

    تحديد السبب تحرير

    وصف العالم البولندي Tadeusz Browicz عصية قصيرة في أعضاء وبراز ضحايا التيفوئيد في عام 1874. [75] كان Browicz قادرًا على عزل وتنمو العصيات ولكنه لم يذهب إلى حد التلميح أو إثبات أنها تسببت في المرض. [73]

    في أبريل 1880 ، قبل ثلاثة أشهر من نشر إيبرث ، وصف إدوين كليبس عصيات قصيرة وخيطية في بقع باير في ضحايا التيفود. [76] دور البكتيريا في المرض تم التكهن به ولكن لم يتم تأكيده. [73]

    في عام 1880 ، وصف كارل جوزيف إيبرث عصية يشتبه في أنها سبب التيفود. [77] [78] [79] تم منح إبيرث الفضل في اكتشاف البكتيريا بشكل نهائي عن طريق عزل البكتيريا نفسها بنجاح من 18 من 40 ضحية للتيفوئيد والفشل في اكتشاف البكتيريا الموجودة في أي من ضحايا "السيطرة" لأمراض أخرى. [73] في عام 1884 ، أكد عالم الأمراض جورج ثيودور أوغست جافكي (1850-1918) النتائج التي توصل إليها إيبرث. [80] عزل جافكي نفس بكتيريا إبيرث من طحال أحد ضحايا التيفود ، وتمكن من إنماء البكتيريا على وسط صلب. [73] تم تسمية الكائن الحي بأسماء مثل عصية إيبرث ، إبيرثيلا Typhi و Gaffky-Eberth bacillus. [73] اليوم ، يطلق على العصوية التي تسبب حمى التيفود الاسم العلمي السالمونيلا المعوية، المصلي التيفي. [81]

    تحرير المياه بالكلور

    كان لدى معظم البلدان المتقدمة معدلات منخفضة من حمى التيفود طوال النصف الأول من القرن العشرين بسبب التطعيمات والتقدم في الصرف الصحي العام والنظافة. جرت محاولات في عام 1893 لتطهير إمدادات المياه بالكلور في هامبورغ بألمانيا وفي عام 1897 كانت ميدستون ، إنجلترا أول مدينة يتم فيها معالجة إمدادات المياه بالكامل بالكلور. [82] في عام 1905 ، بعد اندلاع حمى التيفود ، وضعت مدينة لينكولن بإنجلترا كلورة دائمة للمياه. [٨٣] تم إجراء أول تطهير دائم لمياه الشرب في الولايات المتحدة في عام 1908 لمصدر المياه في مدينة جيرسي ، بولاية نيو جيرسي. تم منح الفضل في قرار بناء نظام المعالجة بالكلور إلى John L. Leal. [84] مرفق الكلورة صممه جورج دبليو فولر. [85]

    أدى تفشي المرض في المجموعات العسكرية المتنقلة إلى إنشاء كيس Lyster في عام 1915 ، وهو كيس به صنبور يمكن تعليقه من شجرة أو عمود مملوء بالماء ، ويأتي مع قرص معالجة بالكلور لإسقاطه في الماء. [73] كانت حقيبة Lyster ضرورية لبقاء الجنود الأمريكيين في حرب فيتنام. [73]

    تحرير ناقل الحركة المباشر والتيفوئيد

    كانت هناك عدة حالات لرجال توصيل اللبن ينشرون حمى التيفود في جميع أنحاء المجتمعات التي يخدمونها. على الرغم من أن التيفود لا ينتشر من خلال الحليب نفسه ، إلا أن هناك العديد من الأمثلة على موزعي الحليب في العديد من المواقع يسقيون حليبهم بالماء الملوث ، أو ينظفون الزجاجات التي وضع الحليب فيها بالماء الملوث. [73] [86] كان لدى بوسطن حالتان من هذا القبيل في مطلع القرن العشرين. [86] في عام 1899 ، كانت هناك 24 حالة من حالات التيفود تم تتبعها إلى بائع حليب واحد ، توفيت زوجته بسبب حمى التيفود قبل أسبوع من تفشي المرض. [86] في عام 1908 ، ج. مات فالون ، الذي كان يعمل حلّابًا أيضًا ، من حمى التيفوئيد. [86] بعد وفاته وتأكيد تشخيص حمى التيفود ، أجرت المدينة تحقيقًا في أعراض وحالات التيفود على طول طريقه ووجدت دليلًا على تفشي المرض بشكل كبير. بعد شهر من الإبلاغ عن تفشي المرض لأول مرة ، نشرت صحيفة بوسطن غلوب بيانًا قصيرًا يعلن انتهاء التفشي ، مشيرًا إلى "[أ] سهول جامايكا هناك زيادة طفيفة ، حيث بلغ العدد الإجمالي 272 حالة. وفي جميع أنحاء المدينة ، هناك إجمالي 348 حالة. حالات." [86] تم الإبلاغ عن حالة وفاة واحدة على الأقل أثناء هذه الفاشية: السيدة صوفيا إس إنجستروم ، تبلغ من العمر 46 عامًا. الحمى ، على الرغم من أن هذه الحالات لم تكن مرتبطة صراحةً بتفشي المرض. [86] كان حي جامايكا بلين في ذلك الوقت موطنًا لكثير من الطبقة العاملة والفقراء المهاجرين ، ومعظمهم من أيرلندا. [87]

    كانت ماري مالون ، المعروفة باسم ماري تيفوئيد ، أشهر حاملة لحمى التيفود ، ولكنها ليست الأكثر تدميراً بأي حال من الأحوال. [88] [89] على الرغم من أن الحالات الأخرى لانتشار التيفود من إنسان لآخر كانت معروفة في ذلك الوقت ، إلا أن مفهوم الناقل بدون أعراض ، والذي كان قادرًا على نقل المرض ، تم افتراضه فقط ولم يتم تحديده أو إثباته بعد. [73] أصبحت ماري مالون أول مثال معروف على الناقل بدون أعراض لمرض معد ، مما يجعل حمى التيفوئيد أول مرض معروف يمكن نقله على الرغم من مضيفه بدون أعراض. [73] أصبحت قضيتها سيئة السمعة لأسباب اجتماعية متعددة. أولاً ، كانت الحالات والوفيات التي تسببت فيها ماري مالون من عائلات الطبقة العليا في مدينة نيويورك. [73] في وقت تولي ماري منصب طاهية شخصية لعائلات الطبقة العليا ، أبلغت مدينة نيويورك عن 3000 إلى 4500 حالة إصابة بحمى التيفود سنويًا. [73] في صيف عام 1906 أصيبت ابنتان من عائلة ثرية وخادمات يعملن في منزلهما بحمى التيفوئيد. [73] بعد التحقق من مصادر المياه في المنزل واستبعاد تلوث المياه ، استعانت العائلة بالمهندس المدني جورج سوبر لإجراء تحقيق في المصدر المحتمل لحمى التيفود في المنزل. [73] وصف سوبر نفسه بأنه "مقاتل وبائي". [73] استبعد تحقيقه العديد من مصادر الطعام ، ودفعه إلى التساؤل عما إذا كان الطباخ الذي عينته الأسرة قبل تفشي المرض في المنزل ، مالون ، هو المصدر. [73] نظرًا لأنها تركت بالفعل وبدأت العمل في مكان آخر ، شرع في تعقبها من أجل الحصول على عينة من البراز. [73] عندما تمكن أخيرًا من مقابلة السيدة مالون شخصيًا ، وصفها بالقول "ماري لديها شخصية جيدة وربما يطلق عليها رياضية لولا أنها كانت ثقيلة جدًا." [90] كما أوضح انطباعه عنها ، قائلاً: "ماري تسير كرجل أكثر من كونها امرأة وأن عقلها له طابع ذكوري واضح أيضًا". [90] وهكذا ، توضح هذه الاقتباسات المباشرة العامل الاجتماعي الثاني الذي ساهم في شهرة "التيفوئيد ماري": كره النساء. [91] على الرغم من حقيقة أن مدينة نيويورك شهدت العديد من الفاشيات الأخرى بنفس الحجم في نفس الوقت ، وكان هناك العديد من الفاشيات المدمرة المرتبطة بالرجال ، إلا أن سوبر شحذ مالون ونشر دراسات حالة ومقالات عنها ، مستفيدًا من وضعها كامرأة مهاجرة من الطبقة العاملة وعدم قدرتها على الدفاع عن نفسها وتأكيد حقوقها في خصوصية المعلومات الشخصية والطبية. [73] [91] [90] في روايات عن مطاردة سوبر لمالون ، يبدو أن ندمه الوحيد هو أنه لم يُمنح الفضل الكافي لسعيه الدؤوب ونشر معلومات تعريفها الشخصية ، مشيرًا إلى أن وسائل الإعلام "سرقت ] أيا كان الفضل في اكتشاف أول حامل حمى التيفوئيد تم العثور عليه في أمريكا ". [91] في النهاية ، اشتبه في أن السيدة مالون تسببت في 51 حالة و 3 حالات وفاة. [92] [89]

    في عام 1924 ، تعرضت مدينة بورتلاند بولاية أوريغون لتفشي حمى التيفود ، والتي تتكون من 26 حالة و 5 وفيات ، وجميعها وفيات بسبب نزيف في الأمعاء. [93] تم التوصل إلى أن جميع الحالات ترجع إلى عامل مزرعة حليب واحد ، كان يفرز كميات كبيرة من مسببات التيفود في بوله. [93] خطأ في تحديد المرض ، بسبب نتائج اختبار Widal غير الدقيقة ، والتأخر في تحديد هوية الناقل والعلاج المناسب. [93] في النهاية ، تم أخذ أربع عينات من إفرازات مختلفة من جميع عمال الألبان من أجل التعرف على الناقل بنجاح. [93] عند الاكتشاف ، تم إجبار عامل الألبان على الحجر الصحي لمدة سبعة أسابيع ، وأخذت عينات منتظمة ، معظم الوقت لم تسفر عينات البراز عن التيفود وغالبًا ما ينتج البول العامل الممرض. [93] تم الإبلاغ عن أن الحامل يبلغ من العمر 72 عامًا ويبدو بصحة جيدة ولم تظهر عليه أعراض. [93] قلل العلاج الدوائي من كمية البكتيريا التي تم إفرازها ، ولكن لم يتم إزالة العدوى تمامًا من البول مطلقًا ، وتم إطلاق الناقل "بموجب أوامر عدم الانخراط مرة أخرى في التعامل مع الأطعمة للاستهلاك البشري". [93] في وقت إطلاق سراحه ، لاحظ المؤلفان أنه "لأكثر من خمسين عامًا كان يكسب رزقه بشكل رئيسي عن طريق حلب الأبقار ولا يعرف إلا القليل عن أشكال العمل الأخرى ، يجب توقع أن المراقبة الأقرب ستكون ضرورية للتأكد من انه لا يشارك مرة اخرى في هذا الاحتلال ". [93]

    بشكل عام ، في أوائل القرن العشرين ، بدأت مهنة الطب في تحديد حاملي المرض ، وإثبات انتقال العدوى بشكل مستقل عن تلوث المياه. [73] في منشور للجمعية الطبية الأمريكية عام 1933 ، أفضل تلخيص لعلاج الأطباء للحاملين بدون أعراض هو السطر الافتتاحي "حاملات عصيات التيفوئيد تشكل خطرًا". [94] في نفس المنشور ، تم إعطاء أول تقدير رسمي لحاملات التيفود: 2 إلى 5٪ من جميع مرضى التيفود ، وميز بين حاملي التيفود المؤقتين والناقلات المزمنة. [94] ويقدر المؤلفون كذلك أن هناك 4 إلى 5 ناقلات إناث مزمنة لكل حامل ذكر واحد ، على الرغم من عدم تقديم أي بيانات لتفسير هذا التأكيد على وجود اختلاف بين الجنسين في معدل ناقلات التيفود. [94] فيما يتعلق بالعلاج ، يقترح المؤلفون: "عند التعرف على الناقلين يجب توجيه تعليمات بشأن التخلص من الفضلات وكذلك أهمية النظافة الشخصية. يجب منعهم من تناول الطعام أو الشراب المخصص للآخرين ، و يجب الإبلاغ عن تحركاتهم وأماكن وجودهم إلى مسؤولي الصحة العامة ". [94]

    اليوم ، توجد ناقلات التيفود في جميع أنحاء العالم ، ولكن من المرجح أن تحدث أعلى نسبة من العدوى بدون أعراض في جنوب / جنوب شرق آسيا ودول جنوب الصحراء الكبرى. [1] [95] قسم الصحة العامة في مقاطعة لوس أنجلوس يتتبع حاملات التيفوئيد ويبلغ عن عدد الناقلات التي تم تحديدها داخل المقاطعة سنويًا بين عامي 2006 و 2016 0-4 حالات جديدة من ناقلات التيفود تم تحديدها سنويًا. [1] يجب الإبلاغ عن حالات حمى التيفود في غضون يوم عمل واحد من تحديد الهوية. اعتبارًا من عام 2018 ، يجب على حاملي التيفود المزمن التوقيع على "اتفاقية الناقل" ومطلوب منهم اختبار تساقط التيفود مرتين سنويًا ، ويفضل كل 6 أشهر. [96] قد يتم إعفاء الناقلين من اتفاقياتهم عند استيفاء متطلبات "الإفراج" ، بناءً على استكمال خطة العلاج الشخصية المصممة مع المهنيين الطبيين. [96] متطلبات إطلاق حامل البراز أو المرارة: 6 عينات متتالية من البراز والبول السلبي تقدم كل شهر أو أكثر على فترات تبدأ على الأقل 7 أيام بعد الانتهاء من العلاج. [96] متطلبات إطلاق البول أو الكلى: يتم تقديم 6 عينات بول سلبية متتالية كل شهر أو فترات أكبر تبدأ على الأقل 7 أيام بعد الانتهاء من العلاج. [96] اعتبارًا من عام 2016 ، كانت نسبة الذكور: الإناث من الناقلين في مقاطعة لوس أنجلوس 3: 1. [1]

    نظرًا لطبيعة الحالات التي لا تظهر عليها أعراض ، لا تزال هناك العديد من الأسئلة حول كيفية قدرة الأفراد على تحمل العدوى لفترات طويلة من الزمن ، وكيفية تحديد مثل هذه الحالات ، وخيارات العلاج الفعالة. يعمل الباحثون حاليًا على فهم الإصابة غير المصحوبة بأعراض السالمونيلا من خلال دراسة العدوى في حيوانات المختبر ، مما سيؤدي في النهاية إلى تحسين خيارات الوقاية والعلاج لحاملات التيفود. في عام 2002 ، وصف الدكتور جون جون قدرة السالمونيلا ص. لتكوين أغشية حيوية على حصوات المرارة في الفئران ، مما يوفر نموذجًا لدراسة النقل في المرارة. [97] وصفت الدكتورة دينيس موناك والدكتور ستانلي فولكو نموذجًا للفأر من العدوى المعوية والجهازية بدون أعراض في عام 2004 ، واستمر الدكتور موناك في إثبات أن مجموعة فرعية من فائق الانتشار هي المسؤولة عن غالبية انتقال العدوى إلى مضيفين جدد. وفقًا لقاعدة 80/20 الخاصة بانتقال المرض ، ومن المحتمل أن تلعب الجراثيم المعوية دورًا في انتقال المرض. [98] [99] يسمح نموذج الفأر للدكتور موناك بنقل السالمونيلا على المدى الطويل في الغدد الليمفاوية المساريقية والطحال والكبد. [98]

    تحرير تطوير لقاح

    طور عالم البكتيريا البريطاني ألمروث إدوارد رايت لقاحًا فعالًا ضد التيفود لأول مرة في كلية الطب العسكرية في نيتلي ، هامبشاير. تم تقديمه في عام 1896 واستخدمه البريطانيون بنجاح خلال حرب البوير الثانية في جنوب إفريقيا. [100] في ذلك الوقت ، قتل التيفوئيد في كثير من الأحيان عددًا أكبر من الجنود في الحرب مما فقده بسبب قتال العدو. طور رايت لقاحه في قسم أبحاث افتتح حديثًا في كلية الطب بمستشفى سانت ماري في لندن منذ عام 1902 ، حيث أسس طريقة لقياس المواد الواقية (أوبسونين) في دم الإنسان. [101] تم إنتاج نسخة رايت من لقاح التيفوئيد عن طريق زراعة البكتيريا في درجة حرارة الجسم في المرق ، ثم تسخين البكتيريا إلى 60 درجة مئوية "لتعطيل" العامل الممرض ، وقتله ، مع الحفاظ على المستضدات السطحية سليمة. ثم تم حقن البكتيريا المميتة بالحرارة في المريض. [73] لإظهار دليل على فعالية اللقاح ، قام رايت بعد ذلك بجمع عينات مصل من المرضى لعدة أسابيع بعد التطعيم ، واختبر قدرة المصل على تلصيق بكتيريا التيفود الحية. تم تمثيل النتيجة "الإيجابية" من خلال تكتل البكتيريا ، مما يشير إلى أن الجسم ينتج مصلًا مضادًا (يسمى الآن الأجسام المضادة) ضد العامل الممرض. [73]

    مستشهدا بمثال حرب البوير الثانية ، التي مات خلالها العديد من الجنود من أمراض يمكن الوقاية منها بسهولة ، أقنع رايت الجيش البريطاني بضرورة إنتاج 10 ملايين جرعة لقاح للقوات التي يتم إرسالها إلى الجبهة الغربية ، وبالتالي إنقاذ ما يصل إلى نصف مليون شخص خلال الحرب العالمية الأولى [102] كان الجيش البريطاني هو المقاتل الوحيد عند اندلاع الحرب الذي قام بتحصين قواته بالكامل ضد البكتيريا. ولأول مرة ، تجاوز عدد ضحاياهم بسبب القتال عدد ضحايا المرض. [103]

    في عام 1909 ، اعتمد فريدريك ف. راسل ، وهو طبيب بالجيش الأمريكي ، لقاح التيفود الذي ابتكره رايت لاستخدامه مع الجيش ، وبعد عامين ، أصبح برنامج التطعيم الخاص به هو الأول الذي يتم فيه تحصين جيش بأكمله. قضت على التيفود كسبب مهم للمراضة والوفيات في الجيش الأمريكي. [104] أصبح التطعيم ضد التيفوئيد إلزاميًا لأفراد الجيش الأمريكي في عام 1911. [73] قبل اللقاح ، كان معدل حمى التيفوئيد في الجيش 14000 أو أكثر لكل 100000 جندي. بحلول الحرب العالمية الأولى ، كان معدل التيفود في الجنود الأمريكيين 37 لكل 100000. [73]

    خلال الحرب العالمية الثانية ، سمح جيش الولايات المتحدة باستخدام لقاح ثلاثي التكافؤ - يحتوي على مسببات أمراض التيفوئيد المعطلة بالحرارة وباراتيفي أ وباراتيفي ب. [73]

    في عام 1934 ، أتاح اكتشاف مستضد المحفظة Vi بواسطة Arthur Felix و Miss S. R. [105] عزل آرثر فيليكس ومارجريت بيت أيضًا سلالة Ty2 ، التي أصبحت السلالة الأم لـ Ty21a ، السلالة المستخدمة كلقاح حي موهن لحمى التيفوئيد اليوم. [106]

    المضادات الحيوية ومقاومة التحرير

    تم عزل الكلورامفينيكول من ستربتوميسيس بواسطة الدكتور ديفيد جوتليب خلال الأربعينيات. [73] في عام 1948 ، اختبر أطباء الجيش الأمريكي فعاليته في علاج مرضى التيفود في كوالالمبور ، ماليزيا. [73] الأفراد الذين تلقوا دورة كاملة من العلاج تخلصوا من العدوى ، في حين أن المرضى الذين أعطوا جرعة أقل عانوا من الانتكاس. [73] الأهم من ذلك ، أن الناقلات عديمة الأعراض استمرت في التخلص من العصيات على الرغم من العلاج بالكلورامفينيكول - فقط المرضى المرضى تم تحسينهم بالكلورامفينيكول. [73] أصبحت مقاومة الكلورامفينيكول متكررة في جنوب شرق آسيا بحلول الخمسينيات من القرن الماضي ، واليوم يستخدم الكلورامفينيكول كملاذ أخير فقط بسبب الانتشار الكبير للمقاومة. [73]

    تمت الإشارة إلى المرض بأسماء مختلفة ، وغالبًا ما ترتبط بأعراض ، مثل حمى المعدة ، والحمى المعوية ، والتيفوس البطني ، والحمى الطفولية الناقلة ، والحمى البطيئة ، والحمى العصبية ، والحمى القيحية ، [107] وحمى التصريف والحمى المنخفضة. [108]


    الأمراض التي تنقلها القراد في ولاية كارولينا الشمالية: Is & # x201c ريكيتسيا أمبليومي & # x201d سبب محتمل لمرض الريكتسي تم الإبلاغ عنه على أنه حمى روكي ماونتين المرقطة؟

    تصاعدت حالات حمى جبال روكي المبقعة (RMSF) في ولاية كارولينا الشمالية بشكل ملحوظ منذ عام 2000. في عام 2005 ، حددنا مقاطعة في منطقة بيدمونت بها أعداد كبيرة من حالات حمى جبال الروكي. قمنا بجمع القراد وفحصناها بحثًا عن مسببات الأمراض البكتيرية باستخدام الطرق الجزيئية لتحديد ما إذا كان ناقل القراد الجديد أو مجموعة الحمى المرقطة (SFGR) قد ظهر. Amblyomma americanum، قراد النجم الوحيد ، يتألف من 99.6٪ من 6،502 عينة تم جمعها في المناظر الطبيعية في الضواحي. فى المقابل، المتغيرات ديرماسينتور، القراد الكلب الأمريكي ، ناقل رئيسي لـ ريكتسيا ريكتسي، تتألف من & lt 1٪ من القراد التي تم جمعها. أصيب 11 من 25 بركًا من القراد ذي النجوم المنفردة "Rickettsia amblyommii ،" SFGR المسمى بشكل غير رسمي. تم اختبار الأمصال من المرضى من نفس المقاطعة الذين تم تشخيصهم بشكل افتراضي من قبل الأطباء المحليين بمرض ينقله القراد بواسطة مقايسة الأجسام المضادة المناعية غير المباشرة (IFA) لتأكيد التشخيصات السريرية. أظهر ثلاثة من ستة مرضى تم تصنيفهم على أنهم حالات RMSF محتملة ارتفاعًا بمقدار أربعة أضعاف أو أكبر في عيارات الأجسام المضادة من فئة IgG بين مصل الدم الحاد والنقاهة إلى "ر. أمبليومي " المستضدات ، ولكن ليس R. ريكتسي المستضدات. أيل ذو ذيل أبيض، Odocoileus virginianus، هي مضيفات مفضلة لقراد النجمة الوحيدة. تم اختبار عينات الدم التي تم جمعها من الغزلان التي قتلت الصياد من نفس المقاطعة بواسطة اختبار IFA للأجسام المضادة لـ إرليشيا شافينسيس و "ر. أمبليومي. " ثمانية وعشرون (87٪) من 32 الغزلان كانت موجبة للأجسام المضادة لـ E. chaffeensis، ولكن فقط 1 (3 ٪) من الغزلان عرضت الأجسام المضادة لـ "ر. amblyommii ، " مما يشير إلى أن الغزلان ليست مصدر "ر. أمبليومي " عدوى قراد النجم الوحيد. نقترح أن بعض حالات الإصابة بالريكتسيات التي تم الإبلاغ عنها باعتبارها RMSF قد تكون ناجمة عن "ر. أمبليومي " تنتقل عن طريق لدغة أمريكانوم.


    شاهد الفيديو: حقائق تتصاعد الأدلة أن البكتيريا يمكن أن تؤثر على المزاج (أغسطس 2022).